دوره 10، شماره 40 - ( 6-1399 )
جلد 10 شماره 40 صفحات 102-91 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
jafari hafshejani R, gheibi hajivar F, nikkhah S. Effect of Silymarin on Blood Glucose and Hnf1a Gene Expression in Streptozotocin-Induced Diabetic Male Wistar Rats. NCMBJ 2020; 10 (40) :91-102
URL: http://ncmbjpiau.ir/article-1-1320-fa.html
URL: http://ncmbjpiau.ir/article-1-1320-fa.html
جعفری هفشجانی رحمان، غیبی حاجیور فرشید، نیک‌خواه سجاد. تأثیر سیلیمارین بر قند خون و بیان ژن Hnf1a در رت های نر ویستار دیابتی شده با استرپتوزوتوسین. مجله تازه هاي بيوتكنولوژي سلولي و مولكولي. 1399; 10 (40) :91-102
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد شهرکرد، دانشگاه اسلامی آزاد ، شهرکرد، ایران
چکیده: (2335 مشاهده)
سابقه و هدف: امروزه تحقیقات نشان داده است که گیاهان دارویی نسبت به داورهای صنعتی و شیمیایی عوارض جانبی کمتر دارند. از سویی بررسی ها حاکی از نقش مهم ژن Hnf1a در بیماری دیابت است، بنابراین هدف از این مطالعه بررسی تأثیر سیلیمارین بر قند خون و بیان ژن Hnf1a در رت های نر ویستار دیابتی شده با استرپتوزوتوسین می باشد.
مواد و روش ها: ۴۲ سر رت نر به‌صورت تصادفی انتخاب شدند و به 7 گروه شش‌تایی تقسیم شدند، رتهای دیابتی با ماده استرپتوزوتوزسین (دوز 50 میلیگرم بر هر کیلوگرم وزن رت) دیابتی شدند و به سه گروه از آن ها دوزهای 50، 100 و 150 میلیگرم بر کیلوگرم سیلیمارین داده شد و قند خون ناشتای آنها سنجیده شد و پس از پایان دوره رتها با داروی بی‌هوش و تشریح شدند. مقداری از بافت پانکراس جدا سازی و برای بررسی بیان ژن Hnf1a به روش Real Time RT PCR استفاده شد.
یافته ها: بررسی Hnf1alpha در دوز 150 میلی گرم بر کیلو گرم در رت های دریافت کننده سیلی مارین کاهش چشم گیری در بیان ژن Hnf1alpha مشاهده شد و به عنوان دوز موثر معرفی شد (05/0P-Value< ) و همچنین میزان قند خون به 100 میلی گرم بر دسی لیتر رسید و باتوجه به این که مصرف سیلی مارین در کشور رایج نمیباشد، میتوان در تحقیقات آینده اهمیت بیشتری به اثرات سیلی مارین داده شود و به عنوان یه داروی موثر در نظر گرفته شود.
نتیجه گیری: با بررسی نتایج بدست آمده از این تحقیق میتوان نتیجه گرفت که سیلیمارین باعث کاهش قند خون در بیماری دیابت میشود و و در صورت تایید در مطالعات گسترده میتواند به عنوان یک هدف درمانی در بیماری دیابت مطرح باشد.
مواد و روش ها: ۴۲ سر رت نر به‌صورت تصادفی انتخاب شدند و به 7 گروه شش‌تایی تقسیم شدند، رتهای دیابتی با ماده استرپتوزوتوزسین (دوز 50 میلیگرم بر هر کیلوگرم وزن رت) دیابتی شدند و به سه گروه از آن ها دوزهای 50، 100 و 150 میلیگرم بر کیلوگرم سیلیمارین داده شد و قند خون ناشتای آنها سنجیده شد و پس از پایان دوره رتها با داروی بی‌هوش و تشریح شدند. مقداری از بافت پانکراس جدا سازی و برای بررسی بیان ژن Hnf1a به روش Real Time RT PCR استفاده شد.
یافته ها: بررسی Hnf1alpha در دوز 150 میلی گرم بر کیلو گرم در رت های دریافت کننده سیلی مارین کاهش چشم گیری در بیان ژن Hnf1alpha مشاهده شد و به عنوان دوز موثر معرفی شد (05/0P-Value< ) و همچنین میزان قند خون به 100 میلی گرم بر دسی لیتر رسید و باتوجه به این که مصرف سیلی مارین در کشور رایج نمیباشد، میتوان در تحقیقات آینده اهمیت بیشتری به اثرات سیلی مارین داده شود و به عنوان یه داروی موثر در نظر گرفته شود.
نتیجه گیری: با بررسی نتایج بدست آمده از این تحقیق میتوان نتیجه گرفت که سیلیمارین باعث کاهش قند خون در بیماری دیابت میشود و و در صورت تایید در مطالعات گسترده میتواند به عنوان یک هدف درمانی در بیماری دیابت مطرح باشد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
سلولی و مولکولی
دریافت: 1399/7/30 | پذیرش: 1399/6/10 | انتشار: 1399/6/10
دریافت: 1399/7/30 | پذیرش: 1399/6/10 | انتشار: 1399/6/10
فهرست منابع
1. Scott RA, Scott LJ, Mägi R, Marullo L, Gaulton KJ, Kaakinen M, et al. An expanded genome-wide association study of type 2 diabetes in Europeans. Diabetes. 2017:db161253.
2. Skyler JS, Bakris GL, Bonifacio E, Darsow T, Eckel RH, Groop L, et al. Differentiation of diabetes by pathophysiology, natural history, and prognosis. Diabetes. 2017;66(2):241-55.
3. Volkov P, Bacos K, Ofori JK, Esguerra JLS, Eliasson L, Rönn T, et al. Whole-genome bisulfite sequencing of human pancreatic islets reveals novel differentially methylated regions in type 2 diabetes pathogenesis. Diabetes. 2017:db160996.
4. Wang Q, Zhang M, Torres G, Wu S, Ouyang C, Xie Z, et al. Metformin suppresses diabetes-accelerated atherosclerosis via the inhibition of Drp1-mediated mitochondrial fission. Diabetes. 2017;66(1):193-205.
5. Association AD. 15. Diabetes Advocacy: Standards of Medical Care in Diabetes-2018. Diabetes care. 2018;41(Suppl 1):S152.
6. Tripathi BK, Srivastava AK. Diabetes mellitus: Complications and therapeutics. Medical Science Monitor. 2006;12(7):RA130-RA47.
7. Gatreh-Samani K, Farrokhi E, Khalili B, Rafieian-Kopaei M, Moradi M. Purslane (Portulaca oleracea) effects on serum paraoxanase-1 activity. Journal of Shahrekord Uuniversity of Medical Sciences. 2011;13.
8. Suji G, Sivakami S. Approaches to the treatement of diabetes mellitus: an overview. Cellular and molecular biology (Noisy-le-Grand, France). 2003;49(4):635-9.
9. Topaloğlu Ö, Evren B, Şahin İ. Monogenic Diabetes Case Presented with Symptomatic Hyperglycemia and Atypical Mutation. Journal of Clinical Research in Pediatric Endocrinology. 2017;9(1):14.
10. Iacovazzo D, Flanagan SE, Walker E, Quezado R, de Sousa Barros FA, Caswell R, et al. MAFA missense mutation causes familial insulinomatosis and diabetes mellitus. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2018:201712262.
11. López‐Noriega L, Cobo‐Vuilleumier N, Narbona‐Pérez ÁJ, Araujo‐Garrido JL, Lorenzo PI, Mellado‐Gil JM, et al. Levothyroxine enhances glucose clearance and blunts the onset of experimental type 1 diabetes mellitus in mice. British journal of pharmacology. 2017;174(21):3795-810.
12. Stueck AE, Qu Z, Huang MAY, Campreciós G, Ferrell LD, Thung SN, editors. Hepatocellular Carcinoma Arising in an HNF-1α–Mutated Adenoma in a 23-Year-Old Woman with Maturity-Onset Diabetes of the Young: A Case Report. Seminars in liver disease; 2015: Thieme Medical Publishers.
13. Jonasson ME, Wicklow BA, Sellers EA, Dolinsky VW, Doucette CA. Exploring the role of the HNF-1α G319S polymorphism in β cell failure and youth-onset type 2 diabetes: Lessons from MODY and Hnf-1α-deficient animal models. Biochemistry and Cell Biology. 2015;93(5):487-94.
14. Knebel B, Mack S, Haas J, Herman-Friede MK, Lange S, Schubert O, et al. Divergent phenotypes in siblings with identical novel mutations in the HNF-1α gene leading to maturity onset diabetes of the young type 3. BMC medical genetics. 2016;17(1):36.
15. Bahmani M, Sarrafchi A, Shirzad H, Rafieian-Kopaei M. Autism: Pathophysiology and promising herbal remedies. Current pharmaceutical design. 2016;22(3):277-85.
16. García-Ramírez M, Turch M, Simó-Servat O, Hernández C, Simó R. Silymarin prevents diabetes-induced hyperpermeability in human retinal endothelial cells. Endocrinologia, diabetes y nutricion. 2018;65(4):200-5.
17. Rahimi R, Karimi J, Khodadadi I, Tayebinia H, Kheiripour N, Hashemnia M, et al. Silymarin ameliorates expression of urotensin II (U-II) and its receptor (UTR) and attenuates toxic oxidative stress in the heart of rats with type 2 diabetes. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2018;101:244-50.
18. Green BD, Irwin N, Duffy NA, Gault VA, O'Harte FP, Flatt PR. Inhibition of dipeptidyl peptidase-IV activity by metformin enhances the antidiabetic effects of glucagon-like peptide-1. European journal of pharmacology. 2006;547(1-3):192-9.
19. MORTAZAVI P, AGHAEY MM, POOSTY I, HOSEINY S. HISTOPATHOLOGIC STUDY OF PANCREAS IN STREPTOZOTOCIN–INDUCED DIABETIC RATS TREATED WITH ETHANOLIC EXTRACT OF PORTULACA OLERACEA (PURSLANE). 2014.
20. Musavi-Ezmareh SF, Mazani M, Heidarian E, Alipanah-Moghadam R, Rafieian-Kopaei M, Ebrahimi M, et al. Effect of hydroalcoholic extract of Chevil (Ferulago angulata) on glucose and lipid in diabetic male rats. Iranian Journal of Endocrinology and Metabolism. 2015;17(3):230-7.
21. Hosseinpour Feizi M, Saed S, Babaei E, Montazeri V, Halimi M. Evaluation of Nucleostemin Gene Expression as a New Molecular Marker in Breast Tumors. Journal of Kerman University of Medical Sciences. 2012;19(2).
22. Yuan JS, Reed A, Chen F, Stewart CN. Statistical analysis of real-time PCR data. BMC bioinformatics. 2006;7(1):85.
23. Valenzuela A, Garrido A. Biochemical bases of the pharmacological action of the flavonoid silymarin and of its structural isomer silibinin. Biological Research. 1994;27:105-.
24. Soto CP, Perez BL, Favari LP, Reyes JL. Prevention of alloxan-induced diabetes mellitus in the rat by silymarin. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Pharmacology, Toxicology and Endocrinology. 1998;119(2):125-9.
25. Stockinger L, Trost W, Uebel H. Quantification électronique des lésions hépatiques experimentales, mises en évidence en histologie. Arch Anat Cytol Pathol. 1976;24:203-9.
26. Soto C, Recoba R, Barron H, Alvarez C, Favari L. Silymarin increases antioxidant enzymes in alloxan-induced diabetes in rat pancreas. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. 2003;136(3):205-12.
27. Hunt JV, Dean RT, Wolff SP. Hydroxyl radical production and autoxidative glycosylation. Glucose autoxidation as the cause of protein damage in the experimental glycation model of diabetes mellitus and ageing. Biochemical journal. 1988;256(1):205-12.
28. Valenzuela A, Aspillaga M, Vial S, Guerra R. Selectivity of silymarin on the increase of the glutathione content in different tissues of the rat. Planta medica. 1989;55(05):420-2.
29. Utrilla M. Natural products with hepatoprotective action. Methods and findings in experimental and clinical pharmacology. 1996;18:11-2.
30. Malekinejad H, Taheri-Brujerdi M, Janbaz-Acyabar H, Amniattalab A. Silymarin regulates HIF-1α and iNOS expression in the brain and gills of hypoxic-reoxygenated rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquatic Biology. 2012;15(3):261-73.
31. Atawia RT, Mosli HH, Tadros MG, Khalifa AE, Mosli HA, Abdel-Naim AB. Modulatory effect of silymarin on inflammatory mediators in experimentally induced benign prostatic hyperplasia: emphasis on PTEN, HIF-1α, and NF-κB. Naunyn-Schmiedeberg's archives of pharmacology. 2014;387(12):1131-40.
32. Jin Y, Zhao X, Zhang H, Li Q, Lu G, Zhao X. Modulatory effect of silymarin on pulmonary vascular dysfunction through HIF-1α-iNOS following rat lung ischemia-reperfusion injury. Experimental and therapeutic medicine. 2016;12(2):1135-40.
33. Locke JM, Saint-Martin C, Laver TW, Patel KA, Wood AR, Sharp SA, et al. The Common HNF1A Variant I27L is a Modifier of Age at Diabetes Diagnosis in HNF1A-MODY Individuals. Diabetes. 2018:db180133.
34. Haliyur R, Tong X, Sanyoura M, Shrestha S, Lindner J, Saunders DC, et al. Human islets expressing HNF1A variant have defective β cell transcriptional regulatory networks. The Journal of clinical investigation. 2018;129(1).
35. Ozsu E, Cizmecioglu FM, Mutlu GY, Yuksel AB, Calıskan M, Yesilyurt A, et al. Maturity Onset Diabetes of the Young due to Glucokinase, HNF1-A, HNF1-B, and HNF4-A Mutations in a Cohort of Turkish Children Diagnosed as Type 1 Diabetes Mellitus. Hormone research in paediatrics. 2018:1-9.
36. Najmi LA, Aukrust I, Flannick J, Molnes J, Burtt N, Molven A, et al. Functional investigations of HNF1A identify rare variants as risk factors for type 2 diabetes in the general population. Diabetes. 2017;66(2):335-46.
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
