دوره 11، شماره 41 - ( 9-1399 )                   جلد 11 شماره 41 صفحات 82-67 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Rashid A, Molavi F, Mahmoudzadeh H. The effect of silver nanoparticles on mecA gene expression in methicillin-resistant samples of Staphylococcus aureus. NCMBJ 2020; 11 (41) :67-82
URL: http://ncmbjpiau.ir/article-1-1346-fa.html
رشید احمد، مولوی فرحناز، محمودزاده هما. بررسی اثر نانوذرات نقره بر روی بیان ژن mecA در نمونه های مقاوم به متی سیلین باکتری استافیلوکوکوس اورئوس. مجله تازه هاي بيوتكنولوژي سلولي و مولكولي. 1399; 11 (41) :67-82

URL: http://ncmbjpiau.ir/article-1-1346-fa.html


گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد،ایران ، farahmolavi@gmail.com
متن کامل [PDF 6792 kb]   (1707 دریافت)     |   چکیده (HTML)  (4037 مشاهده)
متن کامل:   (2129 مشاهده)

بررسی اثر نانوذرات نقره بر روی بیان ژن mecA

در نمونه­های مقاوم­به متی­سیلین باکتری استافیلوکوکوس اورئوس

احمد رشید، فرحناز مولوی*، هما محمودزاده

گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد،ایران


چکیده

سابقه و هدف: باکتری استافیلوکوکوس اورئوس یک عامل شایع در عفونت­های بیمارستانی است و افزایش مقاومت­به عوامل ضدمیکروبی در این باکتری یکی از مشکل­هی عمده بخش مراقبت‌های بهداشتی است هم­چنین ما شاهد سویه­های مقاوم شده این باکتری هستیم که پاتوژن­های مهم در بروز بیماری و مرگ و میر هستند لذا کنترل این باکتری‌ها ازنظر بهداشتی و اقتصادی اهمیت زیادی دارند. هدف از این تحقیق، بررسی میزان شیوع ژن مقاومت به متی­سیلین mecA و تعیین الگوی مقاومت آنتی­بیوتیکی در نمونه­های موجود استافیلوکوکوس اورئوس و بررسی فعالیت ضدباکتریایی نانوذرات نقره علیه باکتری گرم مثبت استافیلوکوکوس اورئوس است.

مواد و روش‌‌ها: در این مطالعه مقطعی - توصیفی 59 استافیلوکوکوس  اورئوس  از 11 آزمایشگاه تشخیص طبی جمع آوری گردید. این نمونه­ها با استفاده از روش­های استاندارد آزمایشگاهی و کشت اختصاصی تعیین هویت شدند. برای بررسی فراوانی ژن mecA از روش PCR استفاده شد. به­منظور ارزیابی الگوی حساسیت آنتی­بیوتیکی سویه­ها، از روش انتشار دیسک بر اساس پروتکل CLSI انجام گردید. نانوذره نقره توسط عصاره زنجبیل ساخته شد و برای بررسی اثر نانوذره نقره بر بیان ژن mecA از روش Real time PCR استفاده شد.

یافته­ها: از 59 نمونه استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم 51 نمونه به متی­سیلین بودند. ارزیابی فنوتیپی الگوی مقاومت آنتی­بیوتیکی سویه­های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم­به متی­سیلین نشان داد که 90 درصد جدایه­ها به پنی­سیلین، 85 درصد به اریترومایسین 84 درصد به سفتریاکسون53 درصد به آمیکاسین، 49 درصد به جنتامایسین، 47 درصد به پیراسیلین، 45 درصد به سپیروفلوکساسین 37 درصد به ایمی­پتمو 35 درصد به لینزولید مقاومت داشتند یعنی بیش­ترین میزان مقاومت آنتی­بیوتیکی به­ترتیب متعلق­به پنی­سیلین 90درصد، اریترومایسین85 درصد و کم­ترین نسبت­به ایمی پتمو 37 درصد و لینزولید 35 بود. بررسی مولکولی نشان دهنده حضور ژن mecA در تمام نمونه­ها بود. و نتیجه بررسی ریل­تایم نشان داد که تأثیر نانوذره بر روی بیان ژن mecA معنادار است (P<0/01 ).

نتیجه‌گیری: وجود51 نمونه مقاوم  از 59 نمونه درمطالعه حاضر نشان دهنده افزایش مقاومت استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم­به متی­سیلین نسبت به سایر آنتی­بیوتیک­های مختلف بوده که این مسئله یک هشدار جدی جهت درمان عفونت­های ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس است. و مؤثر بودن نانوذره نقره بر بیان ژن mecA نشان می­دهد که به این ماده می­توان به­عنوان یک جایگزین برای آنتی­بیوتیک­های موجود فکر کرد.

واژه­های کلیدی: استافیلوکوکوس  اورئوس، متی­سیلین، نانوذره نقره، مقاومت آنتی‌بیوتیکی، ژن mecA


 

مقدمه

استافیلوکوکوس اورئوس [1] که به استافیلوکوکوس طلایی نیز شهرت دارد یک کوکسی گرم مثبت و بی­هوازی اختیاری است و از نظر پزشکی مهم­ترین گونه این جنس محسوب می­شود (1) استافیلوکوکوس اورئوس ممکن است در حالت عادی روی پوست انسان یا سایر پستانداران یک هم­زیست باشد که در این حالت عفونت ایجاد نمی­کند (2). ولی اگر پوست آسیب ببیند این باکتری می­تواند به بافت­ها نفوذ کرده و عفونت­های شدیدی ایجاد کند. این باکتری یکی از عوامل مهم عفونت­ها در بیمارستان و یکی ازعوامل اصلی بیماری‏زا‏‏ در انسان محسوب ‏‏‏شود به­طوری­که در حال حاضر یک نگرانی عمده برای سلامت عمومی جامعه محسوب می­شود که می­تواند با درگیر کردن قسمت‏ها‏ی مختلف بدن از جمله دستگاه تنفس باعث صرف هزینه‏ها‏ی فراوان و طولانی شدن دوره درمان بیمار ‏‏‏شود (3). هم­چنین این باکتری سبب بیماری­های خطرناک ازجمله زرد زخم تاولی، سندرم فلسی شدن پوست[2] ، سندرم رایتر و سندرم شوک توکسیک[3] به­ویژه در کودکان و افرادی که ضعف سیستم ایمنی دارند، می­شود (4). از مهم­تریـن مشکلات در درمـان عفونت­هـای استافیلوکوکی بــروز مقاومــت آنتی­بیوتیکــی و پتانســیل کســب ژن­هــای خارجــی در جهــت بــروز ایــن مقاومت­هــا در آن­ها است بنابراین ســویه­های مقــاوم­بــه متــی­ســیلین اســتافیلوکوکوس اورئوس یا [4]MRSA  تهدیــد جدی در کنترل عفونت­هــای اکتســابی از بیمارســتان و جامعــه بــه­شــمار می­آینــد و رونــد درمــان عفونت­هــای ایــن باکتــری را بــا مشــکل مواجــه می­ســازند (5). مقاومت­به متی­سیلین و سایر پنی­سیلین‌های مقاوم­به پنی­سیلیناز به­دلیل اپرون   mec است. این اپرون، بخشی از کاست کروموزومی استافیلوکوکی[5]  است. ژن  mecA، پروتئین متصل شونده به پنی سیلین با نام PBP2a را کد می‌کند که میل پیوندی پایینی برای آنتی‌بیوتیک‌های بتالاکتام دارد. لازم است بدانید که پروتئین‌های PBP در ساخت و ساز دیواره سلولی باکتریایی نقش دارند. از این­رو، وجود چنین پروتئین جدیدی تحت تأثیر آنتی­بیوتیک نخواهد بود و باکتری به­راحتی به زندگی خود ادامه می‌دهد. این سویه‌ها در اصطلاح استافیلوکوکوس­‌های مقاوم­به متی­سیلین نامیده می­شوند. نانوذرات گروهی از اتم­ها، یون­ها یا مولکول­هایی هستند که اندازه آن­ها بین 1 تا 100 نانومتر باشد و به­دلیل کوچکی سایز قادر هستند که در شکاف­های مولکول­های کوچک نفوذ کنند و ایجاد گسستگی در آن­ها نمایند (6) لذا نانوذرات را می­توان نسل جدیدی از آنتی­بیوتیک­های آینده به­حساب آورد (7). هدف از تحقیق پیش­رو شناسایی ژن  mecA  و تعیین الگوی مقاومت آنتی­بیوتیکی و بررسی اثر نانوذره بر روی بیان ژن mecA است.

مواد و روش­ها

این مطالعه که به­صورت توصیفی-مقطعی[6] و در یک بازه زمانی 7 ماهه (1398-1399) انجام شد، تعداد 59 نمونه استافیلوکوکوس اورئوس از 11 آزمایشگاه سطح شهر مشهد جمع آوری شد. پس از انتقال سویه­ها که بر روی محیط آگار،کشت داده شده بود به آزمایشگاه تحقیقات گروه زیست­شناسی دانشگاه آزاد اسلامی واحد مشهد، جهت شناسایی نمونه­ها از تست­های استاندارد شامل رنگ­آمیزی گرم، کاتالاز، کواگولاز لوله­ای و لامی، رشد در مانیتول سالت آگار و DNase  استفاده شد (8). باکتری استافیلوکوس اورئوس استاندارد (ATCC=25923) از آزمایشگاه استاندارد ایران تهیه شد.

 به­منظور بررسی مقاومت­به متی­سیلین و الگوی حساسیت آنتی­بیوتیکی از محیط مولر هینتون آگار و روش انتشار دیسک در آگار استفاده شد (9). دیسک­های آنتی­بیوتیک استفاده شده در این مطالعه شامل: پنی­سیلین µg30، سیپروفلوکساسینµg 10، جنتامایسین  µg 10، لینزولیدµg 20، اریترومایسین  µg2، ایمی­یتمو µg5 و سفوکسیتین µg30 بود که از شرکت پادتن طب تهیه شد. این مرحله براساس دستورالعمل استاندارد آزمایشگاه (10) انجام شد.

ساخت نانوذره نقره

 5 گرم زنجبیل آسیاب شده را در 50 سی­سی آب مقطر حل کرده (در این روش برای هر گرم پودر گیاه 10 سی­سی آب مقطر استریل اضافه می­شود) و 15 دقیقه جوشیده شد. بعد محلول در ویال 50 میلی­لیتری ریخته شد و 12 دقیقه با دور 4000 سانتریفیوژ گردید. بعد از سانتریفیوژ، محلول فوقانی به یک پلیت منتقل گردید و پس از فیلتر شدن این محلول در 20 سانتی­متری آتش، 10 میلی­لیتر از عصاره فیلتر شده زنجبیل را در ویال 50 میلی­لیتری ریخته و 10 میکرولیتر از محلول نیترات نقره 1 میلی­مولار به آن اضافه شد. بعد از تغییر رنگ، محلول در میکروتیوپ­های 2 میلی­لیتری ریخته شده و با دور 14000 به­مدت 10 دقیقه سانتریفیوژ گردید. سپس محلول رویی دور ریخته شد و 2 میلی­لیتر آب دیونیزه یا آب مقطر به آن اضافه گردید و مجدد سانتریفیوژ شد بعد 3 بار تکرار این مرحله، رسوب انتهایی را در پلیت­های جداگانه ریخته و در محل تاریک گذاشته تا خشک شود و پودر نانوذره آماده گردد. برای بررسی خصوصیت فیزیکی نانوذره به­دست آمده از روش­های عکس­برداری میکروسکوپ الکترونی عبوری ( دانشگاه فردوسی مشهد)، FTIR (دانشگاه آزاد واحد مشهد) و دستگاه طیف سنج پراش پرتو ایکس XRD (دانشگاه فردوسی مشهد) استفاده شد.

تعیین حساسیت آنتی­بیوتیکی

 برای این منظور نمونه­ها با استفاده از دیسک دیفیوژن در محیط جامد یا روش کربی بائر و طبق دستورالعمل استاندارد CLSI  بررسی شدند (11) برای این منظور، از باکتری­های رشد کرده سوسپانسیونی معادل 5/0 مک­فارلند تهیه گردید و بر روی محیط مولر هینتون آگار به­صورت کشت سفره­ای کشت داده شد. پلیت­ها به­مدت 10 تا 15 دقیقه در دمای اتاق قرار گرفتند تا باکتری­ها  با شرایط جدید سازگاری یابند. پس از آن دیسک­های آنتی­بیوتیک با پنس استریل در سطح محیط قرار گرفت به­طوری­که فاصله دیسک­ها از لبه پلیت 5/1 سانتی­متر و نسبت­به هم 5/2  سانتی­متر بود. سپس پلیت 18 الی 24 ساعت در انکوباتور با دمای 37 درجه سانتی­گراد  قرار گرفتند. بعد از این مدت اطراف دیسک­ها از لحاظ هاله عدم رشد مورد بررسی قرار گرفتند  )قطر ناحیه اطراف دیسک توسط خط کش مخصوص[7] اندازه­گیری و با مراجعه به جداول کمیته ملی معیارهای آزمایشگاهی بالینی[8] حساسیت یا مقاومت باکتری به آنتی­بیوتیک­های رایج تعیین گردید. در نهایت پس از 24 ساعت انکوبه کردن در دمای 37 درجه سانتی­گراد، حداقل غلظت بازدارندگی رشد[9]  باکتری تعیین شد. برای این منظور همانند روش دیسک دیفیوژن سوسپانسیونی تهیه شده و کدورت آن را برابر با نیم­مک فارلند قرار داده و بر روی محیط مولر هینتون آگار کشت سفره­ای داده شد.

استخراج RNA

استخراج RNA بعد از تیماردهی سوسپانسیون باکتری دارای ژن mecA با نانوذره نقره (با رقت بعد از حداقل غلظت بازدارندگی رشد) انجام شد. استخراج RNA با استفاده از کیت مخصوص (5292) شرکت پارس طوس زیست فناور، انجام و پس از آن غلظت و جذب نوری تمامی  RNA‌های استخراج شده با کمک نانودراپ (Nanodrop Bio Tek Epoch, USA)  اندازه­گیری شد.
ساخت: پس از تعیین مقدار و غلظت RNA  ساخته شده، برای ساخت cDNA از RNA استخراج شده از کیت مخصوص (A101161)  شرکت پارس طوس زیست فناور استفاده شد.

PCR ژنmecA

 پس از BLAST پرایمرهای سنتز شده توسط نرم­افزار اولیگو (oligo 7.60) در سایت NCBI ، واکنش  PCRبه حجم نهایی 25 میکرولیتر انجام شد. در این واکنش، 1 میکرولیتر از cDNA الگو، 5/0 میکرولیتر از آنزیم Taq DNA Polymerase( 5 واحد در میکرولیتر)، 5/0 میکرولیتر از هر پرایمر(20 پیکومول در میکرولیتر)، 2 میکرولیتر از مخلوط دزوکسی نوکلئوتیدهای تری­فسفات (5/2 میلی­مولار)، 5/2 میکرولیتر بافر PCR (10x) و 5/1 میکرولیتر از نمک MgCl2 (50 میلی­مولار) با یکدیگر مخلوط شده، حجم نهایی با آب دوبار تقطیر شده به 25 میکرولیتر رسانده شد. واکنش در 33 سیکل با برنامه دمایی، دناتوراسیون اولیه 94 درجه سلسیوس به­مدت 6 دقیقه برای 34 سیکل در شرایط زیر عبارتند از؛ واسرشته شدن[10] 95درجه سلسیوس 5 دقیقه، اتصال پرایمر[11] 57 درجه برای 50 ثانیه، طویل شدن[12]72 درجه سلسیوس برای 1 دقیقه و یک بسط نهایی 72 درجه سلسیوس برای 6 دقیقه انجام شد.

جهت بررسی کیفیت محصول PCR، محصول بر روی ژل آگارز 1 درصد الکتروفورز در بافر TBE به­مدت 60 دقیقه در ولتاژ 100 الکتروفورز شد (12). برای رنگ آمیزی ژل، آن­را به­مدت 15 دقیقه در تانک حاوی اتیدیوم بروماید قرار داده و نتایج را توسط دستگاه Geldocument با نور فرابنفش مورد مطالعه قرار گرفت. از نشانگر Cat. No. PR911653.100bp شرکت سیناکلون برای تخمین اندازه قطعه­ها استفاده شد. میزان تغییر بیان ژن با استفاده از نرم­افزار SPSS16 و آزمون One way ANOVA تجزیه و تحلیل شد در تمام موارد سطح معنی­داری 01/0 p< در نظر گرفته شد.

سنجش بیان ژن توسط تکنیک Real-TimePCR

واکنش زنجیره­ای پلی­مراز با استفاده از کیت مخصوص دنا زیست (مسترمیکس سایبرگرین ریل‌تایم RealQ Plus 2x Master Mix Green) به­صورت زیر انجام شد: 5/12 میکرولیتر از مسترمیکس، پرایمر رفت 10 میکرومولار به­مقدار 5/0 میکرولیتر، پرایمر برگشت 10 میکرومولار به­مقدار 5/0 میکرولیتر، نمونه 5 نانوگرم cDNA و آب فاقد نوکلئاز تا رساندن حجم تا 25 میکرولیتر استفاده شد. تکثیر قطعه­ای موردنظر در دستگاه Applied Biosystems StepOnePlus با برنامه واسرشت اولیه 95 درجه سانتی­گراد برای یک دقیقه، تکثیر شامل واسرشت در 95 درجه سانتی­گراد برای 30 ثانیه، اتصال در 59 درجه سانتی­گراد برای مدت 40 ثانیه و گسترش در 72 درجه سانتی­گراد برای 60 ثانیه در 35 چرخه انجام شد. از ژنsRNA  16 به­عنوان کنترل داخلی استفاده شد. برای محاسبه میزان بیان نسبی ژن، آنالیز داده­ها و رسم نمودارهای مربوطه از LightCycler  Relative Quantification Software استفاده شد. داده­های مربوط به تعییر بیان ژن mecA با روش 2ΔΔCT با فرض کارایی 100 درصد و با استفاده از آزمون آماری T مستقل در دو گروه آنالیز شد.

جدول 1: توالی الیگونوکلئوتیدی پرایمرهای استفاده شده در تکثیر ژن mecA در استافیلوکوکوس اورئوس و ژن 16S Rrna (12)

توالی نوکلئوتیدی

ژن

F: AAAATCGATGGTAAAGGTTGGC

R: AGTTCTGCAGTACCGGATTTGC

mecA

F:CCCAACCCTTTTCCTTACTTGC

R:CATCAACTTCACCTTCACGC

16S rRNA

نتایج

در این مطالعه مقطعی توصیفی 59 نمونه مورد بررسی قرار گرفت و شناسایی آن­ها توسط تست­های تشخیصی میکروبیولوژی و بیوشیمیایی تأیید شدند و از بین آن­ها 51 نمونه­ها دارای ژن mecA بودند و از لحاظ فنوتیپی به متی­سیلین مقاومت نشان دادند. شکل شماره 1 نتیجه محصول PCR ژن mecA بعد از انجام الکتروفورز است. وجود باند 198 جفت بازی نشان­دهنده مثبت بودن از نظر وجود ژن mecA  است.

 

 

شکل 1: نتایج الکتروفورز حاصل تکثیر ژن mecA (از چپ به راست: مارکر 100 جفت بازی، کنترل مثبت،  نمونه­های مثبت حاوی ژن mecA، طول قطعه موردنظر 198 جفت باز است)

 

تعیین حساسیت میکروبی

 نتایج نشان داد 90 درصد جدایه­ها به پنی­سیلین، 85 درصد به اریترومایسین 84 درصد به سفتریاکسون 53 درصد به آمیکاسین، 49 درصد به جنتامایسین، 47 درصد به پیراسیلین، 45 درصد به سپیروفلوکساسین 37 درصد به ایمی­پتمو 35 درصد به سلفامتوکسازول مقاومت داشتند یعنی بیش­ترین میزان مقاومت آنتی­بیوتیکی به­ترتیب متعلق­به پنی­سیلین (90درصد)، اریترومایسین 85 % و کم­ترین لینزولید بود.

بررسی خواص ضدباکتریایی نانوذرات نقره

 فعالیت ضدمیکروبی نانوذره نقره تولید شده از عصاره زنجبیل  با مشاهده و اندازه­گیری هاله محدودیت رشد باکتری در اطراف دیسک­های حاوی محلول نانوذرات نقره برای تمامی نمونه­های تحت آزمایش مشاهده شد و محلول حاوی نانوذرات نقره دارای فعالیت ضدمیکروبی علیه باکتری­های آزمایش بود و هاله قابل تشخیص که حاصل جلوگیری از رشد میکروب توسط نانوذرات نقره است درتمام  تیمارهای اصلی در مقایسه با نمونه­های شاهد که عصاره ،آب مقطر و نیترات نقره بودند مشاهده شد.  

بررسی ریخت-شناسی نانوذره نقره سنتز شده

بررسی نانوذره نقره با میکروسکوپ الکترونی عبوری نشان داد که نانوذرات تولیدی اکثرا شکل مکعبی با اندازه 39/22 تا 35/93 نانومتر و تعداد بسیار کمی به­صورت مثلثی و میله­ای هستند(شکل 2).

 

شکل 2: تصویر میکروسکوپ الکترونی گذاره از نانوذره نقره ساخته شده

 

مطالعه XRD

بر اساس شکل 3 الگوی پراش اشعه ایکس(xrd)، اندیس­های میلر در سطوح 111، 200، 202 و 311 بوده و به­ترتیب مربوط به زاویه­های 0 5/37،0 3/44 ،0 64/99،  08/78 بوده که وجود نانوکریستال­های نقره را ثابت می­کند. هم­چنین نتایج نشان داد که اکثر نانوذرات شکل مکعبی داشتند و 4 پیک جذبی در آن­ها تشخیص داده شد (شکل 3).

 

 

شکل 3: الگوی پراش اشعه ایکس بر نانوذره نقره ساخته شده در پژوهش

 

بیان ژن mecA بعد از تیمار با مهارکننده نانوذره نقره

 برای مقایسه اثر نانوذره نقره بر بیان ژن mecA، بعد از استخراج RNA و سنتزcDNA بیان ژن به­صورت کمی با استفاده از روش Real Time PCR بررسی شد، نتایج این روش نشان داد که سویه­های مختلف تحت تأثیر نانوذرات نقره تغییر بیان متفاوتی را داشتند و از نظر آماری تفاوت معناداری در مقایسه با بیان ژن 16SrRNA از خود نشان دادند (P<0.05) (شکل 4). منحنی ذوب تعیین کننده عدم جفت شدن آغازگرها، تکثیر اختصاصی قطعه­های ژنی موردنظر و عدم تکثیر قطعه­های غیراختصاصی برای هر ژن را در شکل 5 نشان می­دهد.

 

 

شکل 4: میزان بیان ژن mecA در سویه­های تیمار شده با نانوذرات نقره.

 

 

بحث و نتیجه گیری

استافیلوکوکوس اورئوس یکی از پاتوژن مطرح در سطح جهانی است و به­عنوان دومین باکتری در ایجاد عفونت­های بیمارستانی مطرح است. پس از کشف پنی­سیلین، در ابتدا از این دارو برای درمان عفونت‌های استافیلوکوکی استفاده می‌شد اما روز به­روز به مقاومت آنتی‌بیوتیکی علیه پنی­سیلین افزوده شد به­طوری­که در سال ۱۹۵۰، ۴۰ درصد سویه‌های بیمارستانی به پ‍‍نی­سیلین مقاوم شدند و این میزان در سال ۱۹۶۰ به ۸۰ درصد رسید. علت این پ‍دیده تولید پنی ­سیلیناز توسط باکتری بود که پنی­سیلین را تجزیه می‌کند؛

 

شکل 5: آنالیز منحنی ذوب (Melting curve) برای اطمینان از اختصاصی بودن قطعه­های تکثیر شده ژن mecA که منحنی ژن مورد سنجش در تمام نمونه­ها با هم منطبق و به­صورت یک قله است.

 

بنابراین از آنتی‌بیوتیک‌های جدیدتر یعنی پنی­سیلین‌های مقاوم­به پنی­سیلیناز (مانند اکساسیلین و متی­سیلین) استفاده شد (13). بعد از آن نمونه­های مقاوم­به متی­سیلین که MRSA  نامیده می­شوند گسترش یافتند که به­طور معمول به بیش­تر آنتی­بیوتیک­ها مقاوم هستند و در حال حاضر، سویه­های استافیلوکوکوس  اورئوس مقاوم­به متی­سیلین بسیار فراوان هستند و هم­چنان در حال گسترش هستند (14) مطالعه­های قبلی در شهر مشهد نیز نشان می­دادند که مقاومت در این باکتری روند افزایشی داشته است (15) ولی در سال­های اخیر این روند سرعت بیش­تری گرفته است (16). در یک پژوهش گسترده و پنج ساله نشان داده شد که که فراوانی MRSA در سال 1996 تنها 7/1 ،%در سال 1997 حدود 5/5%، در سال 1998 نیز 5/6 % بوده و این میزان در سال 1999 به بالاترین مقدار خود یعنی حدود 5/6 % رسید (17). افزایش گسترش مقاومت­به متی­سیلین از قبل پیش­بینی شده بود و مطالعه­هایی که در سال 2004 در ترکیه انجام شده بود نشان داده بود که این نوع مقاومت آنتی­بیوتیکی در استافیلوکوکوس اورئوس به شدت در حال گسترش است (5). مطالعه ما نشان داده است که اکثریت نمونه­ای مورد بررسی این مقاومت را کسب کرده اند. فراوان بودن سویه­های مقاوم­به متی­سیلین در ایران، در قبل توسط Jafaree-Sales در سال 2018 (18)، زمانی در سال 2007 (19) و Moradi در سال 2011 (20) نیز گزارش شده بود. هم­چنین Shokri و همکارانشان در سال 1393 با بررسی 176 نمونه بالینی جمع­آوری شده از بخش­های مختلف بیمارستان آیت ا... موسوی زنجان، نشان دادند که کمابیش تمام نمونه­های مورد مطالعه این بیمارستان دارای مقاومت­به متی­سیلین بودند (21) این نتایج نشان می‌دهند که افزایش مقاومت­به آنتی­بیوتیک همواره یکی از مهم‌ترین مشکلات بهداشت جهانی بوده است اینک به تهدیدی روزافزون مبدل گردیده و توسعه‌ راهکاری جدید برای غلبه­بر این مشکل نیازی حیاتی است.

یکی از راه­های امیدوار‌کننده برای از بین بردن مقاومت‌های باکتریایی، استفاده از نانوذرات فلزی است(22).

نانوذرات به­دلیل اندازه‌ کوچک و سطح تماس بالایی که با محیط و میکروارگانیسم‌ها دارند می­توانند باعث افزایش فعالیت بیولوژیک و شیمیایی آن‌ها شوند. همین امر موجب می‌گردد که اثرهای ضدمیکروبی نانوذرات فلزی در مقایسه با خود فلزات بسیار بالاتر باشد. آن‌ها می­توانند پس از ورود به سلول باکتریایی با تداخل در عملکرد پروتئین‌های حاوی سولفور و مولکول‌های دارای فسفر، نظیر DNAکارایی آن‌ها را از بین ببرند (23). در سال‌های اخیر، استفاده از نانوذرات فلزی به­عنوان ترکیب­های ضد اکتری روند رو به رشدی داشته است. از این میان نانوذرات نقره (24)، اکسیدهای تیتانیوم (25)، روی (26،27)، مس (28) و آهن (29،30) به­دلیل خواص ضدباکتری مناسب، بیش از سایر نانوذرات مورد استفاده قرار گرفته‌اند. در خصوص اثر ضدمیکروبی نانوذرات بر روی استافیلوکوکس اورئوس مطالعه­های متعددی انجام شده است. Pishvaee و همکاران در سال 2020 نشان دادند که نانوذره اکسید کروم نقش ضدمیکروبی روی این باکتری دارد (31). اثر ضدمیکروبی نانوذره طلا و مس نیز بر روی استافیلوکوکوس اورئوس در سال 1396 توسط Nadi و همکارنش نشان داده شد (32). اثر ضدمیکروبی نانوذره نیکل بر روی استافیلوکوکوس اورئوس نیز توسط Gahremani و همکاران در سال 1394 ارائه شده است (33). در مطالعه حاضر زمان تماس نانوذره 24 ساعت و غلظت نانوذره با روش استاندارد محاسبه گردید چرا که مطالعه Aasadi و همکاران نشان داد متغیرهای نوع باکتری، زمان تماس و غلظت نانوذرات ‌نقره عوامل مؤثر بر بروز خاصیت ضدمیکروبی نانوذرات نقره است (34).

نتیجه پژوهش حاضر نشان داد که این نانوذره می­تواند اثر ضدمیکروبی روی این باکتری ایفا کند و این اثر را با کم کردن بیان ژن mecA ایفا می­کند. اهمیت بیان ژن mecA در مقاومت این باکتری نسبت­به متی­سیلین و این­که این ژن مسئول مقاومت­به متی­سیلین در این باکتری است در مطالعه­های متعددی گزارش شده است. Ramezanzadeh  و همکاران در سال 2015 در کردستان اعلام کردند که می­توان با روش تکثیر ژن mecA، مقاومت باکتری­ها را شناسایی کرد (36). این تحقیق توسط Santosaningsih  نیز تأیید شد (37). لذا همان­طور که کلیبی بیان کرده بود می­توانیم مقاومت آنتی­بیوتیکی باکتری­ها را بر اساس ژن mecA مقاومت آن­ها شناسایی کنیم (38). این تحقیق نیز با توجه­به این­که تمام نمونه­های مقاوم­به متی­سیلین حامل ژن mecA بوده­اند بیان می­کند که از این ژن می­توانیم به­منظور شناسایی مقاومت متی­سیلین در نمونه­های استافیلوکوکوس اورئوس استفاده کنیم. هم­راستا با نتیجه موجود Asgaree، با تأکید بر اپیدمیولوژی MRSA در ایران از بین 7464 مقاله استخراج شده از پایگاه­های اطلاعاتی، نشان داد که 2690 سویه استافیلوکوکوس اورئوس نشان داد که 95 درصد از سویه ها دارای ژن mecA بودند البته فراوانی نسبی MRSA در مطالعه­های مختلف بین 48/20 % در اصفهان تا 90 %در تهران متغیر بود(39) .

در این پژوهش نانوذره نقره برای بررسی اثر ضدمیکروبی استافیلوکوکوس اورئوس استفاده شد این انتخاب همسو با مطالعه Salmani  و همکارانش در سال 2017 بود که بر روی بررسی فعالیت ضدباکتریایی نانوذرات نقره علیه باکتری‌های گرم مثبت و گرم منفی در محیط آزمایشگاهی مطالعه کردند و براساس نتایج حاصل از این مطالعه باکتری‌های اشرشیاکلای کم­ترین حساسیت و باکتری‌های استافیلوکوکوس اورئوس بیش­ترین حساسیت را نسبت­به نانوذرات نقره نشان دادند (35).

مطالعه حاضر نشان می­دهد که نانوذره نقره می­تواند گزینه­ای باشد برای جلوگیری افزایش شیوع مقاومت در بین سویه­های استافیلوکوکوس اورئوس لذا می­تواند یک گزینه مناسب برای درمان عفونت­های ناشی از استافیلوکوکوس اورئوس در بیمارستان و تغییر رویکرد درمانی باشد. این پیشنهاد در مطالعه Azadi و همکارانش در سال 1395 نیز ارائه شده است و آن­ها ارتباط معنی­داری بین MIC نانوذره نقره در ایزوله­های استافیلوکوکوس اورئوس با منشاء جداسازی نمونه و مقاومت­به متی­سیلین و جنتامایسین را نشان دادند و ایراز کردند که با توجه­به پایین بودن MIC نانو ذره نقره بر ایزوله­های مقاوم­به متی­سیلین، امکان استفاده از آن در کنترل MRSA در عفونت بیمارستانی می­تواند مورد توجه بیش­تری قرار گیرد (40).

سپاسگزاری

این مطالعه حاصل بخشی از پایان­نامه شماره 162263896 احمد رشید برای اخذ درجه کارشناسی ارشد در رشته زیست­شناسی سلولی و مولکولی  از دانشکده علوم پایه دانشگاه آزاد اسلامی واحد مشهد بود. بدین­وسیله ازسرکار خانم بهاره سرگزی که در تمام مراحل اجرای پایان­نامه مشاور طرح بوده­اند و سرکار خانم فائزه غلامی بهار و آقای علی قرایی و تمام کارشناسان محترم آزمایشگاه گروه زیست­شناسی به­ خاطر همکاری در تمام مراحل سپاسگزاری می­گردد.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

منابع

1. V. M. Corman, J. Lienau, M. Witzenrath, [Coronaviruses as the cause of respiratory infections]. Internist (Berl) 60, 1136-1145 (2019).

 

2. Saeed Soleiman-Meigooni.Hospital Outbreak of Middle East Respiratory Syndrome CoronavirusThe new England journal of medicine, august 2013 ,1 vol. 369 no. 5

 

3. A. R. Fehr, R. Channappanavar, S. Perlman, Middle East Respiratory Syndrome: of a Pathogenic Human Coronavirus. Annu Rev Med 68, 387-399 (2017).

 

4. Zhou, P. et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin. Nature. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020).

 

5. World Health Organization. WHO Statement Regarding Cluster of Pneumonia Cases in Wuhan, China Geneva 2020 [updated 9 January 2020 and 14 January 2020]. Available from: https: //www.who.int/china/news/detail/09-01-2020 -who -statement regarding -cluster -of pneumonia -cases-in-wuhan-china.

 

6. Chinese Center for Disease Control and Prevention. Epidemic update and risk assessment of 2019 Novel Coronavirus 28 January 2020 [cited 29 January 2020]. Available from: http://www.chinacdc.cn/yyrdgz/202001/P020200128523354919292.pdf

 

7. Iranian Center for Disease Control and Prevention. Epidemic update and risk assessment of 2019 Novel Coronavirus 28 January 2020.www. Health.sbmu.ac.ir https://www.who.int/csr/sars/biosafety2003_04_25/en

 

8. Chen, Y., Liu, Q. & Guo, D. Emerging coronaviruses: genome structure, replication, and pathogenesis. J. Med. Virol. https://doi.org/10.1002/jmv.25681 (2020).

 

9. Montani JP, Vliet VB. General physiology and pathophysiology of the renin-angiotensin system. Angiotensin Vol. I: Springer; 2004: 3-29.

 

10. Hosseini khalili AR, Thompson J, Kehoe A, Hopkinson NS, et al. Angiotensin-converting enzyme genotype and late respiratory complications of mustard gas exposure. BMC Pulm Med. 2008;8(1):15.

 

11. Crisan D, Carr J. Angiotensin I-converting enzyme: genotype and disease associations. J of Mol Diagn. 2000; 2(3): 105.

 

12. Lu, R. et al. Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding. Lancet. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)30251-8 (2020).

 

13. Zhou, P. et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin. Nature. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020).

 

14. Zhu, N. et al. A novel coronavirus from patients with pneumonia in China, 2019. N. Engl. J. Med. https://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMoa2001017 (2020).

 

15. Xu, X. et al. Evolution of the novel coronavirus from the ongoing Wuhan outbreak and modeling of its spike protein for risk of human transmission. Sci. China Life Sci. https://doi.org/10.1007/s11427-020-1637-5 (2020).

 

16. Hao Xu. High expression of ACE2 receptor of 2019-nCoV on the epithelial cells of oral mucosa. International Journal of Oral Science (2020) 12:8 ; https://doi.org/10.1038/s41368-020-0074-x.

 

17. Hao Zhang et al. The digestive system is a potential route of 2019-nCov infection: a bioinformatics analysis based on single-cell transcriptomes. bioRxiv preprint doi: https://doi.org/10.1101/2020.01.30.927806.

 

18. Jiahua He Huanyu Tao, Yumeng Yan, Sheng-You Huang, Yi Xiao. Molecular mechanism of evolution and human infection with the novel coronavirus (2019-nCoV). bioRxiv preprint doi: https://doi.org/10.1101/2020.02.17.952903.

 

19. Huang, C., et al., SARS coronavirus nsp1 protein induces template-dependent endonucleolytic cleavage of mRNAs: viral mRNAs are resistant to nsp1-induced RNA cleavage. PLoS Pathog, 2011. 7(12): p. e1002433.

 

20. Tanaka, T., et al., Severe acute respiratory syndrome coronavirus nsp1 facilitates efficient propagation in cells through a specific translational shutoff of host mRNA. J Virol, 2012. 86(20): p. 11128-37.

 

21. Graham, R.L., et al., The nsp2 replicase proteins of murine hepatitis virus and severe acute respiratory syndrome coronavirus are dispensable for viral replication. J Virol, 2005. 79(21): p. 13399-411.

 

22. Gadlage, M.J., R.L. Graham, and M.R. Denison, Murine coronaviruses encoding nsp2 at different genomic loci have altered replication, protein expression, and localization. J Virol, 2008. 82(23): p. 11964-9.

 

23. Lei, J., Y. Kusov, and R. Hilgenfeld, Nsp3 of coronaviruses: Structures and functions of a large multi-domain protein. Antiviral Res, 2018. 149: p. 58-74.

 

24. Serrano, P., et al., Nuclear magnetic resonance structure of the nucleic acid-binding domain of severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural protein 3. J Virol, 2009. 83(24): p. 12998-3008.

 

25. Beachboard, D.C., J.M. Anderson-Daniels, and M.R. Denison, Mutations across murine hepatitis virus nsp4 alter virus fitness and membrane modifications. J Virol, 2015. 89(4): p. 2080-9.

 

26. Gadlage, M.J., et al., Murine hepatitis virus nonstructural protein 4 regulates virus-induced membrane modifications and replication complex function. J Virol, 2010. 84(1): p. 280-90.

 

27. Stobart, C.C., et al., Chimeric exchange of coronavirus nsp5 proteases (3CLpro) identifies common and divergent regulatory determinants of protease activity. J Virol, 2013. 87(23): p. 12611-28.

 

28. Zhu, X., et al., Porcine Deltacoronavirus nsp5 Antagonizes Type I Interferon Signaling by Cleaving STAT2. J Virol, 2017. 91(10).

 

29. Angelini, M.M., et al., Severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural proteins 3, 4, and 6 induce double-membrane vesicles. mBio, 2013. 4(4).

 

30. Cottam, E.M., M.C. Whelband, and T. Wileman, Coronavirus NSP6 restricts autophagosome expansion. Autophagy, 2014. 10(8): p. 1426-41.

 

31. Kirchdoerfer, R.N. and A.B. Ward, Structure of the SARS-CoV nsp12 polymerase bound to nsp7 and nsp8 co-factors. Nat Commun, 2019. 10(1): p. 2342.

 

32. Zhai, Y., et al., Insights into SARS-CoV transcription and replication from the structure of the nsp7-nsp8 hexadecamer. Nat Struct Mol Biol, 2005. 12(11): p. 980-6.

 

33. Te Velthuis, A.J., S.H. van den Worm, and E.J. Snijder, The SARS-coronavirus nsp7+nsp8 complex is a unique multimeric RNA polymerase capable of both de novo initiation and primer extension. Nucleic Acids Res, 2012. 40(4): p. 1737-47.

 

34. Egloff, M.P., et al., The severe acute respiratory syndrome-coronavirus replicative protein nsp9 is a single-stranded RNA-binding subunit unique in the RNA virus world. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004. 101(11): p. 3792-6.

 

35. Zeng, Z., et al., Dimerization of Coronavirus nsp9 with Diverse Modes Enhances Its Nucleic Acid Binding Affinity. J Virol, 2018. 92(17).

 

36. Bouvet, M., et al., Coronavirus Nsp10, a critical co-factor for activation of multiple replicative enzymes. J Biol Chem, 2014. 289(37): p. 25783-96.

 

37. Ma, Y., et al., Structural basis and functional analysis of the SARS coronavirus nsp14-nsp10 complex. Proc Natl Acad Sci U S A, 2015. 112(30): p. 9436-41.

 

38. Fang, S.G., et al., Proteolytic processing of polyproteins 1a and 1ab between non-structural proteins 10 and 11/12 of Coronavirus infectious bronchitis virus is dispensable for viral replication in cultured cells. Virology, 2008. 379(2): p. 175-80.

 

39. Ahn, D.G., et al., Biochemical characterization of a recombinant SARS coronavirus nsp12 RNA-dependent RNA polymerase capable of copying viral RNA templates. Arch Virol, 2012. 157(11): p. 2095-104.

 

40. Te Velthuis, A.J., et al., The RNA polymerase activity of SARS-coronavirus nsp12 is primer dependent. Nucleic Acids Res, 2010. 38(1): p. 203-14.

 

41. Adedeji, A.O. and H. Lazarus, Biochemical Characterization of Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus Helicase. mSphere, 2016. 1(5).

 

42. Eckerle, L.D., et al., Infidelity of SARS-CoV Nsp14-exonuclease mutant virus replication is revealed by complete genome sequencing. PLoS Pathog, 2010. 6(5): p. e1000896.

 

43. Jia, Z., et al., Delicate structural coordination of the Severe Acute Respiratory Syndrome coronavirus Nsp13 upon ATP hydrolysis. Nucleic Acids Res, 2019. 47(12): p. 6538-6550.

 

44. Bouvet, M., et al., Viral Disease Research & Therapeutic Development RNA 3'-end mismatch excision by the severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural protein nsp10/nsp14 exoribonuclease complex. Proc Natl Acad Sci U S A, 2012. 109(24): p. 9372-7.

 

45. Minskaia, E., et al., Discovery of an RNA virus 3'->5' exoribonuclease that is critically involved in coronavirus RNA synthesis. Proc Natl Acad Sci U S A, 2006. 103(13): p. 5108-13.

 

46. Bhardwaj, K., et al., RNA recognition and cleavage by the SARS coronavirus endoribonuclease. J Mol Biol, 2006. 361(2): p. 243-56.

 

47. Zhang, L., et al., Structural and Biochemical Characterization of Endoribonuclease Nsp15 Encoded by Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus. J Virol, 2018. 92(22).

 

48. Chen, Y., et al., Biochemical and structural insights into the mechanisms of SARS coronavirus RNA ribose 2'-O-methylation by nsp16/nsp10 protein complex. PLoS Pathog, 2011. 7(10): p. e1002294.

 

49. Decroly, E., et al., Crystal structure and functional analysis of the SARS-coronavirus RNA cap 2'-O-methyltransferase nsp10/nsp16 complex. PLoS Pathog, 2011. 7(5): p. e1002059.

50. Shi, P., et al., PEDV nsp16 negatively regulates innate immunity to promote viral proliferation. Virus Res.

 

 51. Wong, D. W., Oudit, G. Y., Reich, H., Kassiri, Z., Zhou, J., Liu, Q. C., Scholey, J. W. (2007). Loss of angiotensin-converting enzyme-2 (Ace2 accelerates diabetic kidney injury. The American Journal of Pathology, 171(2), 438-451.

 

52. Zhang, H., Penninger, J. M., Li, Y., Zhong, N., & Slutsky, A. S. (2020). Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Medicine, DOI: https://doi.org/10.1007/s00134-020-05985-9

 

53. Fehr A.R., Perlman S. (2015) Coronaviruses: An Overview of Their Replication and Pathogenesis. In: Maier H., Bickerton E., Britton P. (eds) Coronaviruses. Methods in Molecular Biology, vol 1282. Humana Press, New York, NY.

 

54. Cai, G., Cui, X., Zhu, X., & Zhou, J. (2020). A Hint on the COVID-19 Risk: Population Disparities in Gene Expression of Three Receptors of SARS-CoV, Preprints, DOI: doi: 10.20944/preprints202002. 0408.v1.

 

55. Zheng, Y. Y., Ma, Y. T., Zhang, J. Y., & Xie, X., (2020), COVID-19 and the cardiovascular system. Nature Reviews Cardiology, DOI: https://doi.org/10.1038/s41569-020-0360-5.

 

56. Wang, J., Luo, Q., Chen, R., Chen, T., Li, J., (2020), Susceptibility Analysis of COVID-19 in Smokers Based on ACE2. Preprints, DOI:10.20944/preprints202003. 0078.v1

 

57. Grayson Wick. Coronavirus 2020, What is really happening and how to prevent it. updated February 12 th , 2020.

 

58. Wenzhong Liu. COVID-19  Disease: ORF8 and surfsce glycoprotein inhibit Heme Metabolism by binding to Porphyrin. Scholl of Life Science, Yibin University 644000. liuwz@suse.edu.cn.

 

59. Diao, K., Han, P., Pang, T., Li, Y. & Yang, Z. HRCT Imaging Features in Representative Imported Cases of 2019 Novel Coronavirus Pneumonia. Precision Clinical Medicine (2020).

 

60. Chang, D. et al. Epidemiologic and clinical characteristics of novel coronavirus infections involving 13 patients outside Wuhan, China. JAMA (2020).

 

61. To Sing Fung and Ding Xiang Liu. Human Coronavirus: Host-Pathogen Interaction. Annual Review of Microbiology. Annu. Rev. Microbiol. 2019. 73:529–57.

 

62. Masters PS. 2006. The molecular biology of coronaviruses. Adv. Virus Res. 66:193–292.

 

63. LuoH,ChenQ,Chen J,Chen K, Shen X, JiangH. 2005. The nucleocapsid protein of SARS coronavirus has a high binding affinity to the human cellular heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A1.FEBS Lett.579(12):2623–28.

 

64. Kristian G. Andersen1,2,.The proximal origin of SARS-CoV-2. Nat ure Medicine. www.nature.com/naturemedicine. 17 MARCH 2020. https://doi.org/10.1038/s41591-020-0820-9

 

65. Zhou, P. et al. Nature https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020)

 

66. Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020; 395(10223):497- 506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5.

 

67. Chen N, Zhou M, Dong X, Qu J, Gong F, Han Y, et al. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet. 2020; 395(10223):507-513. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30211-7.

 

68. Fang F, Luo X. Facing a major outbreak of new coronavirus infections in 2019: thoughts of pediatricians [J]. Chinese Journal of Pediatrics. 2020; 58(2):81-85. doi: 10.3760/ cma.j.issn.0578-1310. 2020.02.001.

 

69. Rodriguez-Morales AJ, MacGregor K, Kanagarajah S, Patel D, Schlagenhauf P. Going global - Travel and the 2019 novel coronavirus. Travel Med Infect Dis. 2020; 33:101578.

 

70. Khan S, Ali A, Siddique R, Nabi G. Novel coronavirus is putting the whole world on alert. J Hosp Infect. 2020. doi: 10.1016/j.jhin.2020.01.019


[1] Staphylococcus aureus

[2] syndrome skin Scalded

[3] TST

[4] Methicillin Resistant Staphylococcus aureus

[5] SCCmec

[6] sectional-Cross

[7] Antiobiotic Zone Scale ruler

[8] Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI)

[9] Minimum Inhibitory of Concentration: MIC

[10] Denaturation

[11] Annealing

[12] Extension

نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: سلولی و مولکولی
دریافت: 1399/11/11 | پذیرش: 1399/9/10 | انتشار: 1399/9/10

فهرست منابع
1. V. M. Corman, J. Lienau, M. Witzenrath, [Coronaviruses as the cause of respiratory infections]. Internist (Berl) 60, 1136-1145 (2019).
3. Saeed Soleiman-Meigooni.Hospital Outbreak of Middle East Respiratory Syndrome CoronavirusThe new England journal of medicine, august 2013 ,1 vol. 369 no. 5
5. A. R. Fehr, R. Channappanavar, S. Perlman, Middle East Respiratory Syndrome: of a Pathogenic Human Coronavirus. Annu Rev Med 68, 387-399 (2017).
7. Zhou, P. et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin. Nature. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020).
9. World Health Organization. WHO Statement Regarding Cluster of Pneumonia Cases in Wuhan, China Geneva 2020 [updated 9 January 2020 and 14 January 2020]. Available from: https: //www.who.int/china/news/detail/09-01-2020 -who -statement regarding -cluster -of pneumonia -cases-in-wuhan-china.
11. Chinese Center for Disease Control and Prevention. Epidemic update and risk assessment of 2019 Novel Coronavirus 28 January 2020 [cited 29 January 2020]. Available from: http://www.chinacdc.cn/yyrdgz/202001/P020200128523354919292.pdf
13. Iranian Center for Disease Control and Prevention. Epidemic update and risk assessment of 2019 Novel Coronavirus 28 January 2020.www. Health.sbmu.ac.ir https://www.who.int/csr/sars/biosafety2003_04_25/en
15. Chen, Y., Liu, Q. & Guo, D. Emerging coronaviruses: genome structure, replication, and pathogenesis. J. Med. Virol. https://doi.org/10.1002/jmv.25681 (2020).
17. Montani JP, Vliet VB. General physiology and pathophysiology of the renin-angiotensin system. Angiotensin Vol. I: Springer; 2004: 3-29.
19. Hosseini khalili AR, Thompson J, Kehoe A, Hopkinson NS, et al. Angiotensin-converting enzyme genotype and late respiratory complications of mustard gas exposure. BMC Pulm Med. 2008;8(1):15.
21. Crisan D, Carr J. Angiotensin I-converting enzyme: genotype and disease associations. J of Mol Diagn. 2000; 2(3): 105.
23. Lu, R. et al. Genomic characterisation and epidemiology of 2019 novel coronavirus: implications for virus origins and receptor binding. Lancet. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)30251-8 (2020).
25. Zhou, P. et al. A pneumonia outbreak associated with a new coronavirus of probable bat origin. Nature. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020).
27. Zhu, N. et al. A novel coronavirus from patients with pneumonia in China, 2019. N. Engl. J. Med. https://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJMoa2001017 (2020).
29. Xu, X. et al. Evolution of the novel coronavirus from the ongoing Wuhan outbreak and modeling of its spike protein for risk of human transmission. Sci. China Life Sci. https://doi.org/10.1007/s11427-020-1637-5 (2020).
31. Hao Xu. High expression of ACE2 receptor of 2019-nCoV on the epithelial cells of oral mucosa. International Journal of Oral Science (2020) 12:8 ; https://doi.org/10.1038/s41368-020-0074-x.
33. Hao Zhang et al. The digestive system is a potential route of 2019-nCov infection: a bioinformatics analysis based on single-cell transcriptomes. bioRxiv preprint doi: https://doi.org/10.1101/2020.01.30.927806.
35. Jiahua He Huanyu Tao, Yumeng Yan, Sheng-You Huang∗, Yi Xiao. Molecular mechanism of evolution and human infection with the novel coronavirus (2019-nCoV). bioRxiv preprint doi: https://doi.org/10.1101/2020.02.17.952903.
37. Huang, C., et al., SARS coronavirus nsp1 protein induces template-dependent endonucleolytic cleavage of mRNAs: viral mRNAs are resistant to nsp1-induced RNA cleavage. PLoS Pathog, 2011. 7(12): p. e1002433.
39. Tanaka, T., et al., Severe acute respiratory syndrome coronavirus nsp1 facilitates efficient propagation in cells through a specific translational shutoff of host mRNA. J Virol, 2012. 86(20): p. 11128-37.
41. Graham, R.L., et al., The nsp2 replicase proteins of murine hepatitis virus and severe acute respiratory syndrome coronavirus are dispensable for viral replication. J Virol, 2005. 79(21): p. 13399-411.
43. Gadlage, M.J., R.L. Graham, and M.R. Denison, Murine coronaviruses encoding nsp2 at different genomic loci have altered replication, protein expression, and localization. J Virol, 2008. 82(23): p. 11964-9.
45. Lei, J., Y. Kusov, and R. Hilgenfeld, Nsp3 of coronaviruses: Structures and functions of a large multi-domain protein. Antiviral Res, 2018. 149: p. 58-74.
47. Serrano, P., et al., Nuclear magnetic resonance structure of the nucleic acid-binding domain of severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural protein 3. J Virol, 2009. 83(24): p. 12998-3008.
49. Beachboard, D.C., J.M. Anderson-Daniels, and M.R. Denison, Mutations across murine hepatitis virus nsp4 alter virus fitness and membrane modifications. J Virol, 2015. 89(4): p. 2080-9.
51. Gadlage, M.J., et al., Murine hepatitis virus nonstructural protein 4 regulates virus-induced membrane modifications and replication complex function. J Virol, 2010. 84(1): p. 280-90.
53. Stobart, C.C., et al., Chimeric exchange of coronavirus nsp5 proteases (3CLpro) identifies common and divergent regulatory determinants of protease activity. J Virol, 2013. 87(23): p. 12611-28.
54. Zhu, X., et al., Porcine Deltacoronavirus nsp5 Antagonizes Type I Interferon Signaling by Cleaving STAT2. J Virol, 2017. 91(10).
56. Angelini, M.M., et al., Severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural proteins 3, 4, and 6 induce double-membrane vesicles. mBio, 2013. 4(4).
58. Cottam, E.M., M.C. Whelband, and T. Wileman, Coronavirus NSP6 restricts autophagosome expansion. Autophagy, 2014. 10(8): p. 1426-41.
60. Kirchdoerfer, R.N. and A.B. Ward, Structure of the SARS-CoV nsp12 polymerase bound to nsp7 and nsp8 co-factors. Nat Commun, 2019. 10(1): p. 2342.
62. Zhai, Y., et al., Insights into SARS-CoV transcription and replication from the structure of the nsp7-nsp8 hexadecamer. Nat Struct Mol Biol, 2005. 12(11): p. 980-6.
64. Te Velthuis, A.J., S.H. van den Worm, and E.J. Snijder, The SARS-coronavirus nsp7+nsp8 complex is a unique multimeric RNA polymerase capable of both de novo initiation and primer extension. Nucleic Acids Res, 2012. 40(4): p. 1737-47.
66. Egloff, M.P., et al., The severe acute respiratory syndrome-coronavirus replicative protein nsp9 is a single-stranded RNA-binding subunit unique in the RNA virus world. Proc Natl Acad Sci U S A, 2004. 101(11): p. 3792-6.
68. Zeng, Z., et al., Dimerization of Coronavirus nsp9 with Diverse Modes Enhances Its Nucleic Acid Binding Affinity. J Virol, 2018. 92(17).
70. Bouvet, M., et al., Coronavirus Nsp10, a critical co-factor for activation of multiple replicative enzymes. J Biol Chem, 2014. 289(37): p. 25783-96.
72. Ma, Y., et al., Structural basis and functional analysis of the SARS coronavirus nsp14-nsp10 complex. Proc Natl Acad Sci U S A, 2015. 112(30): p. 9436-41.
74. Fang, S.G., et al., Proteolytic processing of polyproteins 1a and 1ab between non-structural proteins 10 and 11/12 of Coronavirus infectious bronchitis virus is dispensable for viral replication in cultured cells. Virology, 2008. 379(2): p. 175-80.
76. Ahn, D.G., et al., Biochemical characterization of a recombinant SARS coronavirus nsp12 RNA-dependent RNA polymerase capable of copying viral RNA templates. Arch Virol, 2012. 157(11): p. 2095-104.
78. Te Velthuis, A.J., et al., The RNA polymerase activity of SARS-coronavirus nsp12 is primer dependent. Nucleic Acids Res, 2010. 38(1): p. 203-14.
80. Adedeji, A.O. and H. Lazarus, Biochemical Characterization of Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus Helicase. mSphere, 2016. 1(5).
82. Eckerle, L.D., et al., Infidelity of SARS-CoV Nsp14-exonuclease mutant virus replication is revealed by complete genome sequencing. PLoS Pathog, 2010. 6(5): p. e1000896.
84. Jia, Z., et al., Delicate structural coordination of the Severe Acute Respiratory Syndrome coronavirus Nsp13 upon ATP hydrolysis. Nucleic Acids Res, 2019. 47(12): p. 6538-6550.
86. Bouvet, M., et al., Viral Disease Research & Therapeutic Development RNA 3'-end mismatch excision by the severe acute respiratory syndrome coronavirus nonstructural protein nsp10/nsp14 exoribonuclease complex. Proc Natl Acad Sci U S A, 2012. 109(24): p. 9372-7.
88. Minskaia, E., et al., Discovery of an RNA virus 3'->5' exoribonuclease that is critically involved in coronavirus RNA synthesis. Proc Natl Acad Sci U S A, 2006. 103(13): p. 5108-13.
90. Bhardwaj, K., et al., RNA recognition and cleavage by the SARS coronavirus endoribonuclease. J Mol Biol, 2006. 361(2): p. 243-56.
92. Zhang, L., et al., Structural and Biochemical Characterization of Endoribonuclease Nsp15 Encoded by Middle East Respiratory Syndrome Coronavirus. J Virol, 2018. 92(22).
94. Chen, Y., et al., Biochemical and structural insights into the mechanisms of SARS coronavirus RNA ribose 2'-O-methylation by nsp16/nsp10 protein complex. PLoS Pathog, 2011. 7(10): p. e1002294.
96. Decroly, E., et al., Crystal structure and functional analysis of the SARS-coronavirus RNA cap 2'-O-methyltransferase nsp10/nsp16 complex. PLoS Pathog, 2011. 7(5): p. e1002059.
97. Shi, P., et al., PEDV nsp16 negatively regulates innate immunity to promote viral proliferation. Virus Res.
99. Wong, D. W., Oudit, G. Y., Reich, H., Kassiri, Z., Zhou, J., Liu, Q. C., Scholey, J. W. (2007). Loss of angiotensin-converting enzyme-2 (Ace2 accelerates diabetic kidney injury. The American Journal of Pathology, 171(2), 438-451.
101. Zhang, H., Penninger, J. M., Li, Y., Zhong, N., & Slutsky, A. S. (2020). Angiotensin-converting enzyme 2 (ACE2) as a SARS-CoV-2 receptor: molecular mechanisms and potential therapeutic target. Intensive Care Medicine, DOI: https://doi.org/10.1007/s00134-020-05985-9
103. Fehr A.R., Perlman S. (2015) Coronaviruses: An Overview of Their Replication and Pathogenesis. In: Maier H., Bickerton E., Britton P. (eds) Coronaviruses. Methods in Molecular Biology, vol 1282. Humana Press, New York, NY.
105. Cai, G., Cui, X., Zhu, X., & Zhou, J. (2020). A Hint on the COVID-19 Risk: Population Disparities in Gene Expression of Three Receptors of SARS-CoV, Preprints, DOI: doi: 10.20944/preprints202002. 0408.v1.
107. Zheng, Y. Y., Ma, Y. T., Zhang, J. Y., & Xie, X., (2020), COVID-19 and the cardiovascular system. Nature Reviews Cardiology, DOI: https://doi.org/10.1038/s41569-020-0360-5.
109. Wang, J., Luo, Q., Chen, R., Chen, T., Li, J., (2020), Susceptibility Analysis of COVID-19 in Smokers Based on ACE2. Preprints, DOI:10.20944/preprints202003. 0078.v1
111. Grayson Wick. Coronavirus 2020, What is really happening and how to prevent it. updated February 12 th , 2020.
113. Wenzhong Liu. COVID-19 Disease: ORF8 and surfsce glycoprotein inhibit Heme Metabolism by binding to Porphyrin. Scholl of Life Science, Yibin University 644000. liuwz@suse.edu.cn.
115. Diao, K., Han, P., Pang, T., Li, Y. & Yang, Z. HRCT Imaging Features in Representative Imported Cases of 2019 Novel Coronavirus Pneumonia. Precision Clinical Medicine (2020).
117. Chang, D. et al. Epidemiologic and clinical characteristics of novel coronavirus infections involving 13 patients outside Wuhan, China. JAMA (2020).
119. To Sing Fung and Ding Xiang Liu. Human Coronavirus: Host-Pathogen Interaction. Annual Review of Microbiology. Annu. Rev. Microbiol. 2019. 73:529–57.
121. Masters PS. 2006. The molecular biology of coronaviruses. Adv. Virus Res. 66:193–292.
123. LuoH,ChenQ,Chen J,Chen K, Shen X, JiangH. 2005. The nucleocapsid protein of SARS coronavirus has a high binding affinity to the human cellular heterogeneous nuclear ribonucleoprotein A1.FEBS Lett.579(12):2623–28.
125. Kristian G. Andersen1,2,.The proximal origin of SARS-CoV-2. Nat ure Medicine. www.nature.com/naturemedicine. 17 MARCH 2020. https://doi.org/10.1038/s41591-020-0820-9
127. Zhou, P. et al. Nature https://doi.org/10.1038/s41586-020-2012-7 (2020)
129. Huang C, Wang Y, Li X, Ren L, Zhao J, Hu Y, Zhang L, et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020; 395(10223):497- 506. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30183-5.
131. Chen N, Zhou M, Dong X, Qu J, Gong F, Han Y, et al. Epidemiological and clinical characteristics of 99 cases of 2019 novel coronavirus pneumonia in Wuhan, China: a descriptive study. Lancet. 2020; 395(10223):507-513. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30211-7.
133. Fang F, Luo X. Facing a major outbreak of new coronavirus infections in 2019: thoughts of pediatricians [J]. Chinese Journal of Pediatrics. 2020; 58(2):81-85. doi: 10.3760/ cma.j.issn.0578-1310. 2020.02.001.
135. Rodriguez-Morales AJ, MacGregor K, Kanagarajah S, Patel D, Schlagenhauf P. Going global - Travel and the 2019 novel coronavirus. Travel Med Infect Dis. 2020; 33:101578.
137. Khan S, Ali A, Siddique R, Nabi G. Novel coronavirus is putting the whole world on alert. J Hosp Infect. 2020. doi: 10.1016/j.jhin.2020.01.019

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.

کلیه حقوق این وب سایت متعلق به مجله تازه های بیوتکنولوژی سلولی - مولکولی می باشد.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2025 CC BY-NC 4.0 | New Cellular and Molecular Biotechnology Journal

Designed & Developed by : Yektaweb