Application of phenazine pigment of Pseudomonas
aeruginosa isolates to prepare colored paper and candle
Maliheh Najafi1, Mahboobeh Nakhaei Moghaddam2*, Mahboobeh Najafi1,
Ehsan Yousefi2
1. Department of Biology, Faculty of Science, Damghan Branch, Islamic Azad University, Damghan, Iran
2. Department of Biology, Faculty of Science, Mashhad Branch, Islamic Azad University, Mashhad, Iran
Abstract
Aim and Background: Microorganisms are more important than other sources in dye production because microorganisms have advantages such as rapid growth, higher yields, and easier extraction. Natural pigments are healthier than chemical types and their use is useful in various industries. The aim of this study was to isolate and extract the pyocyanin pigment from Pseudomonas aeruginosa isolates in order to preparation of colored paper and candle.
Material and Methods: In this study, sampling was performed from different hospital environments in order to isolate P. aeruginosa. Environmental isolates of P. aeruginosa were identified using morphological features and differential biochemical methods. Confirmatory identification was performed by tracing the pbo1 gene using colony PCR. After extracting pyocyanin pigment with chloroform, finally, the produced pyocyanin was used to prepare colored paper and candle and the optical stability of pyocyanin was investigated.
Results: From 43 environmental samples collected, 15 isolates of P. aeruginosa were identified and confirmed by molecular method. The mean of optical absorption (OD520) of pyocyanin after extraction was 0.488. Staining of paper and candle with the extracted pyocyanin was successful and the optical stability of pyocyanin was favorable.
Conclusion: Due to the rapid growth of bacteria and the possibility of its mass production in a short time and based on the results of this study, bacterial pigments can be used in various industries, including paper industry, and replaced by chemical dyes.
Keywords: Pseudomonas aeruginosa, Phenazine, pbo1 gene, Iau Science.
Corresponding author: Department of Biology, Faculty of Science, Mashhad Branch, Islamic Azad University, Mashhad, Iran Email: m.nakhaei@mshdiau.ac.ir |
کاربرد پیگمان فنازین ایزولههای سودوموناس آئروجینوزا
برای تهیه کاغذ و شمع رنگی
ملیحه نجفی1، محبوبه نخعی مقدم2*، محبوبه نجفی1، احسان یوسفی2
1. گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
2. گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران
چکیده
سابقه و هدف: میکروارگانیسمها نسبتبه سایر منابع در تولید رنگ، اهمیت دارند، زیرا میکروارگانیسمها مزایایی از جمله رشد سریع، بازدهی بالاتر و استخراج راحت تر دارند. رنگدانه های طبیعی سالمتر از انواع شیمیایی هستند و استفاده از آنها در صنایع مختلف مفید است. هدف از انجام این تحقیق، جداسازی و استخراج پیگمان پیوسیانین از ایزوله های محیطی سودوموناس آئروجینوزا به منظور تهیه کاغذ و شمع رنگی بود.
مواد و روشها: در این مطالعه، به منظور جداسازی سودوموناس آئروجینوزا، نمونه برداری از محیطهای مختلف انجام شد. ایزوله های محیطی سودوموناس آئروجینوزا با استفاده از ویژگیهای مورفولوژی و روشهای بیوشیمیایی افتراقی شناسایی شدند. شناسایی تأییدی از طریق ردیابی ژن pbo1 با روش کلنی Polymerase Chain Reaction انجام شد. پس از استخراج پیگمان پیوسیانین با کلروفرم، در نهایت از پیوسیانین تولیدی برای تهیه کاغذ و شمع رنگی استفاده و ثبات نوری پیوسیانین بررسی شد.
یافته ها: از 43 نمونه محیطی جمعآوری شده، تعداد 15 ایزوله سودوموناس آئروجینوزا شناسایی و با روش مولکولی تأیید شد. میانگین جذب نوری (OD520) پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا بعد از استخراج 488/0 بود. رنگ آمیزی کاغذ و شمع با پیوسیانین استخراج شده موفقیتآمیز و ثبات نوری پیوسیانین مطلوب بود.
نتیجه گیری: ﺑﺎ ﺗﻮﺟﻪﺑﻪ رﺷﺪ ﺳﺮﻳﻊ ﺑﺎﻛﺘﺮیﻫﺎ و اﻣﻜﺎن ﺗﻮﻟﻴﺪ اﻧﺒﻮه آن در ﻣﺪت زﻣﺎن ﻛﻮﺗﺎه و بر اساس نتایج تحقیق حاضر، ﻣﻲﺗﻮان از پیگمان باکتریها در برخی ﺻﻨﺎﻳﻊ از جمله صنعت کاغذ استفاده و آنها را جایگزین رنگهای شیمیایی کرد.
واژگان کلیدی: سودوموناس آئروجینوزا، فنازین، ژن ،pbo1،. Iau Science
مقدمه
ـــــــــــــــــــــــــــــــــــــــ نویسنده مسئول: گروه زیستشناسی، دانشکده علوم، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران پست الکترونیکی: m.nakhaei@mshdiau.ac.ir تاریخ دریافت: 04/12/1399 تاریخ پذیرش: 23/06/1400 |
شکل 1. ساختار پیوسیانین
در سودوموناس آئروجینورا دو نسخه اختصاصی از اپرون بیوسنتز پیوسیانین (pbo)، به نام (phzI) phz A1 B1 C1 D1 E1 F1 G1 و (phzII) phz A2 B2 C2 D2 E2 F2 G2 وجود دارد. این دو اپرون 3/98 درصد در سطح DNA بهصورت همولوگ هستند، ولی در ناحیه پروموتور متفاوتاند. علاوهبر این، دو ژن دیگر به نامهای phz M و phz S نقش اساسی در مسیر بیوسنتز پیوسیانین دارند (14،13). اثرهای مضر رنگهای مصنوعی و مواد شیمیایی مورد استفاده در زمان رنگآمیزی ما را بر آن داشت تا در مورد تهیه رنگ جایگزین با استفاده از منابع طبیعی تلاش کنیم. بنابراین، با توجهبه اهمیت حفاظت از محیط زیست و نقش پیگمانهای زیستی در کاهش آلودگیهای زیستمحیطی، هدف از انجام این تحقیق، استخراج پیگمان پیوسیانین از ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا به منظور تهیه کاغذ و شمع رنگی بود.
مواد و روشها
جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی سودوموناس آئروجینوزا
برای جمعآوری ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا نمونهبرداری توسط سوآب استریل از نواحی شامل سرویس بهداشتی، صابون، حمام، خاک، دستگاه دیالیز و ساکشن و سطح وسایل در منزل و یا بیمارستان انجام گرفت و سوآب داخل محیط نوترینت براث استریل انداخته شد. پس از انتقال نمونهها به آزمایشگاه میکروبیولوژی دانشگاه آزاد اسلامی مشهد و انکوباسیون شبانه آنها در دمای C°37 و شرایط هوازی، انتقال با روش کشت ایزوله روی محیط ائوزین متیلنبلو آگار و ستریماید آگار انجام گرفت و بهمدت 24 ساعت در دمای C°37 انکوبه شد. سپس کلونیهای مشکوک، جداسازی و خالصسازی شدند. شناسایی بیوشیمیایی باکتریهای سودوموناس آئروجینوزای جدا شده با استفاده از رنگآمیزی گرم و آزمایشهای بیوشیمیایی مرسوم (اکسیداز، کاتالاز، متیل رد، اوره، کشت در محیطهای TSI آگار، SIM، سیمون سیترات، محیط OF و کشت در محیط ستریماید آگار (شکل 2) و رشد در دمای C°42) انجام شد (15).
شناسایی مولکولی سودوموناس آئروجینوزا
جهت تأیید باکتریهای سودوموناس آئروجینوزای جدا شده از نمونههای محیطی و ردیابی ژن تولید پیگمان از روش کلنی PCR و آغازگرهای ژن pbo1 (Sinaclon, Iran) مطابق با جدول 1 استفاده شد. با استفاده از نرمافزارهای بیوانفورماتیکی و دادههای موجود در پایگاه NCBI استخراج توالی دقیق ژن pbo1 صورت پذیرفت. ابتدا توالی کامل ژن pbo1 براساس سایت، http://www.ncbi.nim.nih.yov (سودوموناس آئروجینوزا PAO1 و Accession no=AF005404) در نظر گرفته شد و سپس با نرمافزار oligo 7 پرایمرهای مناسب برای تکثیر بخشی از ژنها طراحی شدند. جهت اطمینان از صحت توالیهای استخراج شده، ارزیابی آنها با استفاده از جعبه ابزار BlastN در پایگاه NCBI انجام شد.
جدول 1. مشخصات آغازگرهای مورد استفاده برای ردیابی ژن pbo1 در ایزولههای سودوموناس آئروجینوزای جدا شده از نمونههای محیطی
توالی آغازگر پیشرو ('3→'5) |
توالی آغازگر پیرو ('3→'5) |
طول محصول PCR (جفت باز) |
CGCTCGGGATCGCTTCTG |
GGACGCCTGACGCTGATC |
400 |
مخلوط واکنش کلنی PCR برای تکثیر ژن pbo1 در حجم نهایی 25 میکرولیتر حاوی 5/0 میکرولیتر dNTPs (mM 2/0)، 75/0 میکرولیتر منیزیم کلرید (mM 2/0)، 1 میکرولیتر از هر یک از آغازگرهای پیشرو و پیرو (Pmol/μl 5/2)، 25/0 میکرولیتر Taq پلیمراز ( unit/μl2/1) (Sinaclon, Iran)، 3 میکرولیتر بافر واکنشگر (X 1)، 1 کلنی از باکتری و 5/17 میکرولیتر آب مقطر آماده شد. کلنی PCR توسط ترموسایکلر (Kyratec, Kore) و مطابق با چرخههای دمایی زیر انجام شد: واسرشت اولیه در دمای C°95 بهمدت 5 دقیقه، واسرشت ثانویه در دمای C°95 بهمدت 1 دقیقه در 30 چرخه، اتصال در دمای C°58 بهمدت 1 دقیقه، بسپارش در دمای C°72 بهمدت 30 ثانیه و بسپارش نهایی در دمای C°72 بهمدت 7 دقیقه. محصولهای واکنش بر روی ژل آگارز 5/1 درصد حاوی اتیدیوم بروماید (CinnaGen, Iran) بهمدت 30 دقیقه با ولتاژ 90 ولت الکتروفورز (Interlab, Italy) شدند. سپس نمونههای رانده شده در ژل توسط دستگاه فرابنفش لومیناتور (Caution, EEC) مشاهده و در نهایت از باندها با استفاده از دستگاه ژل داک (Kimiagene, Iran) عکس گرفته شد (16). از سودوموناس آئروجینوزا با شماره استاندارد ATCC 1074 (تهیه شده از سازمان پژوهشهای علمی و صنعتی ایران) به عنوان کنترل مثبت و از آب مقطر به عنوان کنترل منفی استفاده شد.
استخراج پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا
مقدار 250 میکرولیتر سوسپانسیون سودوموناس آئروجینوزا (01/0OD620 =) رشد یافته در محیط لوریا برتانی (LB, Merck, Germany) به 25 میلیلیتر محیط گلیسرول آلانین (GA, Merck, Germany) تلقیح و بهمدت 24 ساعت در انکوباتور شیکردار (دمای C°37) با سرعت rpm 200 گرماگذاری شد. در مرحله بعد، نمونهها با سرعت rpm 10000 بهمدت 10 دقیقه سانتریفیوژ (Sigma, USA) شدند. مایع رویی جمعآوری و از فیلتر با قطر منافذ 22/0 میکرومتر عبور داده شد. به 5/7 میکرولیتر از مایع رویی فیلتر شده، مقدار 5/4 میلیلیتر کلروفرم اضافه و 10 مرتبه، هر مرتبه بهمدت 2 ثانیه ورتکس شد. این مرحله برای هر ایزوله 3 بار تکرار شد. کلروفرم در ته لوله قرار میگیرد و بهعلت اینکه پیوسیانین در کلروفرم حل میشود، به آبی متمایل به سبز تغییر رنگ میدهد. سانتریفیوژ نمونهها پس از تغییر رنگ با سرعت rpm 10000 به مدت 10 دقیقه سانتریفیوژ شد. مقدار 3 میلیلیتر از لایه آبی رنگ جمع شده در ته لوله (مخلوط کلروفرم و پیوسیانین) به لوله جدید منتقل و بهمنظور اسیدی شدن مخلوط، مقدار 5/1 میلیلیتر اسید کلریدریک 2/0 مولار به آن اضافه و ورتکس شد (تغییر رنگ آبی به صورتی). سپس، نمونهها با سرعت rpm 10000 بهمدت 2 دقیقه سانتریفیوژ و مقدار 1 میلیلیتر از مایع صورتی رنگ به کووت منتقل و جذب آن در طول موج 520 نانومتر توسط دستگاه اسپکتروفتومتر خوانده شد. این آزمایش به طور مشابه، برای تمامی ایزولهها و سویه استاندارد سودوموناس آئروجینوزا ATCC 1074، 3 بار تکرار شد. در نهایت غلظت پیوسیانین با استفاده از فرمول زیر محاسبه شد (17).
5/1 × 072/17 × OD520 = غلظت پیوسیانین (میکروگرم در میلیلیتر)
تهیه کاغذ و شمع رنگی با استفاده از پیگمان پیوسیانین استخراج شده
از پیوسیانین تولید شده در محیط GA برای تهیه کاغذ و شمع رنگی استفاده شد. برای این منظور از ایزولههای با ظرفیت بالاتر پیگمان استفاده شد. رنگ با استفاده از حلال کلروفرم استخراج و به منظور تغلیظ، 24 ساعت در انکوباتور C°37 گذاشته شد. از 25 میلیلیتر محیط GA که سودوموناس آئروجینوزا در آن تولید پیگمان پیوسیانین کرده بود، 18 میلیلیتر محلول رنگ جدا شد که 4 میلیلیتر از آن برای رنگآمیزی کاغذ مورد استفاده قرار گرفت. به این صورت که کاغذ در بشر حاوی محلول قرار داده شد و بعد از 10 دقیقه، کاغذ از بشر خارج و در دمای محیط خشک شد. از لایه آبی شده به پارافین مذاب اضافه گردید. بعد از مدتی پارافین در دمای اتاق میبندد و یک شمع با رنگ پیگمان باکتری تهیه میشود.
بررسی ثبات نوری پیگمان
ثبات نوری کاغذ رنگآمیزی شده مطابق استاندارد ISO 105/B02 توسط دستگاه ثبات نوری (Ress Sanj, Iran) اندازهگیری شد (18).
یافته ها
جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی ایزوله های سودوموناس آئروجینوزا از نمونههای محیطی و ردیابی ژن مولد پیگمان
بر اساس نتایج آزمونهای بیوشیمیایی در جدول 2، تعداد 15 ایزوله سودوموناس آئروجینوزا از نمونههای محیطی جمعآوری شد.
جدول 2. نتایج آزمونهای بیوشیمیایی جهت تشخیص سودوموناس آئروجینوزا
آزمایش |
گرم |
اکسیداز |
کاتالاز |
تخمیر قندها |
اندول |
حرکت |
رشد در محیط ستریماید در دمای C°37 |
متیل رد |
اورهآز |
سیتراتاز |
نتیجه |
باسیل G¯ |
+ |
+ |
- |
- |
+ |
+ |
- |
- |
+ |
نتایج کلنی PCR وجود ژن pbo1 را در تمامی 15 ایزوله سودوموناس آئروجینوزای جدا شده تایید کرد. در شکل 3، ژل الکتروفورز محصول کلنی PCR تعدادی از ایزوله ها در کنار نشانگر 50 جفتبازی نشان داده شده است.
استخراج پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا
پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا بعد از استخراج در شکل 4 نشان داده شده است. میانگین جذب نوری پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا بعد از استخراج با 3 تکرار در جدول 3 آمده است.
همانطوری که در جدول 5 مشخص است، در میان ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا، ایزوله 2 و 11 بیشترین میزان تولید پیوسیانین و ایزوله 10 کمترین مقدار تولید پیگمان را بر اساس جذب نوری در طول موج nm520 داشتند.
شکل 3. ژل الکتروفورز محصول کلنی PCR بعد از تکثیر ژن pbo1 تعدادی از ایزولههای سودوموناس آئروجینوزا (1-4: نمونهها)
شکل 4. پیوسیانین سودوموناس آئروجینوزا بعد از استخراج
جدول3. جذب نوری (OD520) پیوسیانین استخراج شده از ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا
جذب نوری پیوسیانین بعد از استخراج |
باکتری |
||
تکرار سوم |
تکرار دوم |
تکرار اول |
|
507/0 |
501/0 |
502/0 |
استاندارد |
502/0 |
498/0 |
500/0 |
ایزوله 1 |
724/0 |
722/0 |
721/0 |
ایزوله 2 |
490/0 |
492/0 |
490/0 |
ایزوله 3 |
540/0 |
538/0 |
539/0 |
ایزوله 4 |
254/0 |
252/0 |
250/0 |
ایزوله 5 |
340/0 |
387/0 |
388/0 |
ایزوله 6 |
383/0 |
380/0 |
382/0 |
ایزوله 7 |
312/0 |
309/0 |
310/0 |
ایزوله 8 |
673/0 |
675/0 |
670/0 |
ایزوله 9 |
240/0 |
243/0 |
241/0 |
ایزوله 10 |
705/0 |
703/0 |
704/0 |
ایزوله 11 |
341/0 |
359/0 |
358/0 |
ایزوله 12 |
554/0 |
552/0 |
550/0 |
ایزوله 13 |
655/0 |
653/0 |
654/0 |
ایزوله 14 |
667/0 |
665/0 |
661/0 |
ایزوله 15 |
474/0 |
495/0 |
495/0 |
میانگین |
488/0 |
میانگین کل |
رنگآمیزی کاغذ و تهیه شمع با پیگمان پیوسیانین و بررسی ثبات نوری پیوسیانین
شکل 5، کاغذها و شمع رنگآمیزی شده با پیگمان پیوسیانین تولید شده توسط ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا را نشان میدهد. ثبات رنگ کاغذ بعد از رنگآمیزی با پیوسیانین مطلوب تعیین شد.
شکل 5. کاغذها و شمع رنگآمیزی شده با پیگمان پیوسیانین
بحث
پیگمانها ﺑﻪطور وسیعی در تهیه ﻏﺬا، ﭘﻮﺷﺎک، اسباب بازی کودکان، رﻧﮕﺮزی و صنایع دیگر ﺑﻪکار میرود. به این دﻟﻴﻞ که رﻧﮓدﻫﻨﺪهﻫﺎی ﺷﻴﻤﻴﺎﻳﻲ مشکلاتی را برای انسان و محیط زیست اﻳﺠﺎد میﻛﻨﻨﺪ، ﺗﺤﻘﻴﻘﺎت متعددی ﺑﺮای دﺳﺘﻴﺎﺑﻲ ﺑﻪ ﻣﺤﺼﻮلهای ﻣﻄﻤﺌﻦ و پیگمانهای ﻃﺒﻴﻌﻲ از ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﻴﻌﻲ انجام شده است. ﻣﺪاﻓﻌﺎن محیط زیست ﻣﻌﺘﻘﺪﻧﺪ ﻛﻪ رﻧﮓهای طبیعی از ﻟﺤﺎظ ﻛﻴﻔﻲ دارای ﺟﺎﻳﮕﺎه ﺑﺎﻻﺗﺮی ﺑﻮده و ﺑﻪدﻟﻴﻞ ﻃﻴﻒ رﻧﮕﻲ ﮔﺴﺘﺮدهای ﻛﻪ دارند، چشمنوازتر هستند. همچنین، ﺳﺎزﮔﺎری اﻳﻦ دﺳﺘﻪ از رﻧﮓها با ﻃﺒﻴﻌﺖ و ﻗﺎﺑﻠﻴﺖ تجزیهپذیری آنها از اهمیت بالایی برخوردار است. رﻧﮓﻫﺎی ﻃﺒﻴﻌﻲ ﺑﻪدﻟﻴﻞ تنوع بالا و آسان بودن تولید مورد توجه قرار گرفتهاند (19). رﻧﮕﺪاﻧﻪﻫﺎی ﻣﻴﻜﺮوﺑﻲ ﺑﻪدلیل ﺳﺮﻋﺖ رﺷﺪ ﺑﺎﻻی ﻣﻴﻜﺮوبﻫﺎ و اﻣﻜﺎن ﺗﻮﻟﻴﺪ اﻧﺒﻮه اﻳﻦ رﻧﮕﺪاﻧﻪﻫﺎ اهمیت دارند (5). در این رابطه بر آن شدیم تا تولید رنگ از ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا که تحقیقات در مورد جنبه کاربردی آن کم بود و رنگدانه تولیدی نیز رنگ زیبایی داشت، مورد مطالعه قرار دهیم. در همین رابطه، Nowroozi و همکاران گزارش کردند که سودوموناسهایی که دارای ژنهای phzM و phzS هستند، قادر به تولید پیگمان پیوسیانین هستند (20). در این مطالعه، بر اساس آزمایشهای بیوشیمیایی و مولکولی (ردیابی ژن pbo1، ژن اپرون بیوسنتز پیوسیانین) تعداد 15 ایزوله سودوموناس آئروجینوزا از نمونههای محیطی جدا و شناسایی شد. در مطالعه Higgins و همکاران در سال 2018، مشابه با تحقیق حاضر از ژن pbo (phz1 و phz2) برای شناسایی سودوموناس آئروجینوزا استفاده کردند (14). در میان ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا، توانایی تولید پیگمان در ایزولههای مختلف، بر اساس جذب نوری در طول موج nm 520، با یکدیگر و با سویه رفرنس متفاوت بود. Khan و همکاران در سال 2019، مشابه با تحقیق حاضر از سودوموناس آئروجینوزا PAO1 KCTC 1637 پیگمان پیوسیانین استخراج کردند (21). نتیجه رنگآمیزی کاغذ و شمع با پیوسیانین مطلوب و قابل قبول بود. میزان تولید پیگمان در ایزولههای مختلف متفاوت بود که میتوان با شناسایی ایزولههای با پتانسیل تولید بیشتر و بهینهسازی شرایط محیطی، میزان استخراج رنگ را افزایش داد. در تحقیق حاضر نیز، در میان ایزولههای مختلف مورد آزمایش، میزان تولید پیگمان در ایزوله 2 بیشتر از سایرین و سویه رفرنس بود که می تواند به عنوان سویه برتر برای تولید رنگ معرفی شود.
در مطالعههای گذشته، پیشینهای در جهت تهیه کاغذ و شمع رنگی با پیگمانهای سودوموناس آئروجینوزا یافت نشد. مشابه با پژوهش حاضر، در مطالعاههای گوناگون از پیگمانهای باکتریایی در صنایع مختلف از جمله رنگرزی لباس، صنایع غذایی و دارویی و محصولهای آرایشی بهعنوان رنگزا استفاده شده است (22،23). در تحقیق DeBritto و همکاران در سال 2020، پارچههای پنبهای را با پیوسیانین استخراج شده از سودوموناس آئروجینوزا رنگآمیزی کردند که همانند تحقیق حاضر، ثبات رنگ تأیید شد (11). Jissa و همکاران در سال 2008 با استفاده از پیگمان تولید شده توسط گونههای سراشیا اقدام به رنگآمیزی لاستیک، کاغذ، منسوجات و پلاستیک نمودند و بیان کردند که پیگمان استخراج شده خاصیت رنگرزی دارد و همانند تحقیق حاضر، ثبات رنگ با آزمایشات مربوطه تأیید شد (24). Heydari و همکاران در سال 1393، پتانسیل جذب پرتوی فرابنفش توسط رنگدانه جداسازی شده از قارچهای آسپرژیلوس و پنیسیلیوم بهمنظور استفاده در ترکیبهای ضد آفتاب را بررسی نمودند. نتایج بهدست آمده در این مطالعه نشان داد که پیگمانهای جداسازی شده از قارچهای پنیسیلیوم و آسپرژیلوس محافظت خوبی را در مقابل اشعه ماورای بنفش از خود نشان دادهاند. همچنین در زمینه بررسی تنوع رنگ، در بین گونههای قارچی مورد ارزیابی پیگمانهای زرد و مشکی بهترین جذب اشعه را دارا بودند. بنابراین میتوان از این پیگمانهای طبیعی بهجای ترکیبهای شیمیایی در کرمهای ضد آفتاب استفاده نمود (25). در تحقیق حاضر با استخراج پیوسیانین، کاغذ و شمع رنگآمیزی شد که مزایای استفاده از پیگمان باکتریها، رشد سریع، محیط کشت ارزان و تنوع رنگ در رنگدانهها است. محققین نشان دادهاند که پیگمان قارچهایی مثل پنیسیلیوم و موناسکوس را میتوان استخراج نمود و در صنایع چرم، پارچه، کاغذ و رنگ استفاده کرد (26). سودوموناس آئروجینوزا توانایی تولید رنگدانههای محلول در آب نظیر رنگدانه غیر فلوئورسنتی آبی رنگ یا پیوسیانین که محلول در آب و کلروفرم است، رنگدانه فلوئورسنتی سبز رنگ به نام پیوردین، رنگدانه فلوئورسنتی قرمز تیره پیوروبین و رنگدانه فلوئورسنتی سیاه پیوملانین را دارد. پیوسیانین رنگدانه اختصاصی سودوموناس است و میتوان آن را با کلروفرم از محلولهای آبی جدا کرد. اغلب این رنگدانهها دارای عملکردهای زیستی مهمی از جمله فعالیت آنتیبیوتیکی، ضد قارچی و ضد توموری هستند (27). رنگ حاصله برخلاف باکتری مولد آن خاصیت بیماریزایی نداشت، بلکه همانطوریکه ذکر شد میتواند خاصیت ضد میکروبی داشته باشد.
در سالهای اخیر توجه زیادی به پیگمانهای میکروارگانیسمها و مسیرهای بیوسنتز آنها شده است. میکروارگانیسمهایی همچون قارچها و باکتریها میتوانند یک منبع با ارزش برای تولید مواد رنگی باشند و با طیفی گسترده بهکار روند. تولید رنگهای مصنوعی شاید از لحاظ اقتصادی مقرونبه صرفه باشد، اما رنگهای مصنوعی با چالشهایی از جمله وابستگیبه منابع نفتی غیرقابل احیا، سمیت محیطی، مسائل بهداشتی و عدم بازیافت رو بهرو هستند. در حالیکه رنگهای طبیعی مصرف شده میتوانند بازیافت شده و هیچ بوی نامطبوعی ندارند. بنابراین جستجوی منابع طبیعی که از لحاظ زیستمحیطی هم سازگار باشند، برای تولید مواد رنگی یک نیاز ضروری است (28). در تحقیق حاضر با پیگمان طبیعی پیوسیانین کاغذ رنگآمیزی شد، ولی با تحقیقات بیشتر برای تعیین ساختار پیگمانها و حذف گروههای سمی پیگمانها میتوان از آنها در صنایع مختلف استفاده نمود.
پیگمانهای طبیعی از دو منبع مهم گیاهان و میکروارگانیسمها حاصل میشوند. تولید پیگمان از میکروارگانیسمها با توجهبه رشد سریع و آسان، محیط کشت ارزان، استخراج راحتتر، عدم وابستگیبه شرایط جوی و گستردگی تنوع رنگ نسبتبه سایر منابع زیستی دارای مزایای بیشتری است. بستهبه نوع ترکیبها، آنها عملکردهای متفاوت و متنوعی برای میزبان دارند. بهطور مثال عمل حفاظتی در برابر فتواکسیدانهای کشنده مثل کارتنوئیدها و عملکرد حفاظتی در برابر استرسهای محیط مثل ملانینها را دارند و بهعنوان کوفاکتور در کاتالیز آنزیمها مثل فلاوینها شرکت دارند (29).
نتیجهگیری
نتایج تحقیق حاضر نشان داد که ایزولههای محیطی سودوموناس آئروجینوزا در تولید رنگ طبیعی کارآیی داشتند و رنگ تولیدی، از ثبات مطلوبی نیز برخوردار بود. رنگ حاصل، ضمن خوش رنگ بودن و سازگاری با محیط زیست، دارای منبع طبیعی و خطرهای کمتری در مقایسه با رنگهای شیمیایی است. ﺑﺎ ﺗﻮﺟﻪﺑﻪ رﺷﺪ ﺳﺮﻳﻊ ﺑﺎﻛﺘﺮیﻫﺎ و اﻣﻜﺎن ﺗﻮﻟﻴﺪ اﻧﺒﻮه آن در ﻣﺪت زﻣﺎن ﻛﻮﺗﺎه و براساس نتایج تحقیق حاضر، ﻣﻲﺗﻮان از پیگمان پیوسیانین بهعنوان یک رنگ طبیعی برای رنگآمیزی کاغذ و شمع استفاده و آنرا جایگزین رنگهای شیمیایی نمود. همچنین نتایج نشان داد که ردیابی ژن pbo در سودوموناس آئروجینوزا با روش کلنی PCR و پرایمر طراحی شده در این تحقیق، میتواند باعث صرفهجویی در وقت، مواد و هزینه شود و احتمال آلودگی حین کار را نیز کاهش میدهد.
سپاسگزاری
نویسندگان مقاله بدینوسیله مراتب تشکر و قدردانی خود را از مسئولین محترم دانشگاه آزاد اسلامی واحد مشهد جهت فراهم آوردن امکانات پژوهشی برای انجام این تحقیق ابراز میدارند.
منابع
1. Rao MPN, Xiao M, Li WJ. Fungal and bacterial pigments: secondary metabolites with wide applications. Front Microbiol. 2017; 8: 1113.
2. Abdullaev FI. Cancer chemopreventive and tumoricidal properties of saffron (Crocus sativus L.). Exp Biol Med. (Maywood). 2002; 227: 5-20.
3. Kasiri MB and Safapour S. Natural dyes and antimicrobials for green treatment of textiles. Environ Chem Lett. 2014; 12: 1-13.
4. Ghaffarzadeh and Edrisi M. A review on natural pigments and the extraction methods. JSCW (J Stud Color World) 2016; 6: 63-82. [In Persian]
5. Lu Y, Wang L, Xue Y, Zhang C, Xing X, Lou K, Zhang Z, Li Y, Zhang G, Bi J, Su Z. Production of violet pigment by a newly isolated psychrotrophic bacterium from a glacier in Xinjiang, China Biochem Eng J.; 2009.43:135-141.
6. Harasym J, and Bogacz-Radomska L. Colorants in foods-from past to present. Nauki Inz Technol. 2016; 3:21-35.
7. Mehrad B, Ravanfar R, Licker J, Regenstein JM, Abbaspourrad A. Enhancing the physicochemical stability of β-carotene solid lipid nanoparticle (SLNP) using whey protein isolate. Food Res Int. 2018; 105:962-969.
8. Tuli HS, Chaudhary P, Beniwal V, Sharma AK. Microbial pigments as natural color sources: current trends and future perspectives. Int J Food Sci Tech. 2015; 52: 4669-4678.
9. Ghaffarzadeh-Mollabashi O, Sharari M, Alebrahim MT. Investigation on the possibility of producing the pulp and paper from weeds. IJWP. 2017; 8: 241-251. [In Persian]
10. Doosti M, Faghihi MHO, Ramazani A, Saini MR. Comparison of conventional culture methods and Polymerase Chain Reaction (PCR) for specific detection of Pseudomonas aeruginosa. J Isfahan Med Sch. 2012; 30:780-786.
11. DeBritto S, Gajbar TD, Satapute P, Sundaram L, Lakshmikantha RY, Jogaiah S, Ito S. Isolation and characterization of nutrient dependent pyocyanin from Pseudomonas aeruginosa and its dye and agrochemical properties. Sci Rep. 2020; 10: 1542.
12. Blankenfeldt W, Parsons JF. The structural biology of phenazine biosynthesis. Curr Opin Struct Biol. 2014; 29: 26-33.
13. Raji El Feghali P, NawasT. Extraction and purification of pyocyanin: a simpler and more reliable method. MOJ Toxicol. 2018; 4: 417-422.
14. Higgins S, Heeb S, Rampioni G, Fletcher MP, Williams P, Camara M. Differential regulation of the phenazine biosynthetic operons by quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa PAO1-N. Front Cell Infect Microbiol. 2018; 8: 252.
15. Brown A, Horobin A, Blount DG, Hill PJ, English J, Rich A, Williams PM, Pritchard DI. Blow fly Lucilia sericata nuclease digests DNA associated with wound slough/eschar and with Pseudomonas aeruginosa biofilm. Med Vet Entomol. 2012; 26: 432-439.
16. Cao M, Fu Y, Guo Y, Pan J. Chlamydomonas (Chlorophyceae) Colony PCR. Protoplasma. 2008; 235: 107-110.
17. Kandasamy S, Khan W, Evans F, Critchley AT, Prithivira B. A product of ascophyllum nodosum enhances immune response of caenorhabditis elegans against Pseudomonas aeruginosa infection. Mar Drugs. 2012; 10: 84-105.
18. Wojciechowski K, Szadowski J. Spectrophotometric investigation and ppp- Mo calculations of some phenylazophthalimide dyes. Dyes Pigments. 1991; 16: 35-56.
19. Cho YJ, Park JP, Hwang HJ, Kim SW, Choi JW, Yun JW. Production of red pigment by submerged culture of Paecilomyces sinclairii. Lett Appl Microbiol. 2002; 35: 195-202.
20. Nowroozi J, Akhavan Sepahi A, Rashnonejad A. Pyocyanine biosynthetic genes in clinical and environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa and detection of Pyocyanine’s antimicrobial effects with or without colloidal silver nanoparticles. cell J. 2011; 14: 7-18.
21. Khan F, Manivasagan P, Lee JW, Pham DTN, Oh J, Kim YM. Fucoidan-stabilized gold nanoparticle-mediated biofilm inhibition, attenuation of virulence and motility properties in Pseudomonas aeruginosa PAO1. Mar Drugs. 2019; 17: 208.
22. Malik K, Tokkas J, Goyal S. Microbial pigments: a review. Int J Microbial Res Technol. 2012; 1:361-365.
23. Kumar-Samanta A, Agaruval P. Application of natural dyes on textile. Indian J Fiber Text Res. 2009; 34: 384-399.
24. Jissa GK, Soorej MB, Beena PS, Chandrasekaran M. Marine bacteria as source of pigment for application as dye in textile industry. Internatl Conf Biodiv Conserv Mgt. 2008; 743-744.
25. Heydari N, Kazemipour M, Khaleghi M. The potentiality of UV absorption by isolated pigments from Penicillium and Aspergillus for using sunscreen compounds. JMW. 2014; 7: 18-25.
26. Venil CK, Velmurugan P, Dufossé L, Renuka Devi P, Veera Ravi A. Fungal pigments: potential coloring compounds for wide ranging applications in textile dyeing. J Fungi. 2020; 6(2):68.
27. Hamad MNF, Marrez DA, El-Sherbieny SMR. Toxicity evaluation and antimicrobial activity of purified pyocyanin from Pseudomonas aeruginosa. Biointerface Res Appl Chem. 2020; 15: 6974 – 6990.
28. Mehrabi M, Nazemi A, Nasrollahi A. Isolation and molecular identification of pigment producing microorganisms and acute toxicity of pigments. J Microbial Biotechnology. 2011; 3: 19-28.
29. Baker R, Tatum J. Novel anthraquinones from stationary cultures of Fusarium oxysporum. J Ferment Bioeng. 1998; 85: 359-361.
Rights and permissions | |
![]() |
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License. |